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DFE 或 DsRed-2F5-表位是一种重组融合蛋白,由荧光蛋白 DsRed 和 2F5 表位组成,后者是 HIV-1 包膜糖蛋白抗原的一段序列。该表位对其互补位——即 2F5 单克隆抗体互补决定区中的一个区域——具有高亲和力。
为了从粗样品中纯化2F5单克隆抗体,使用一根装有表面固定化DFE亲和配体的多孔树脂微珠的色谱柱。用适当的平衡缓冲液冲洗色谱柱,以维持pH值,并防止后续步骤中样品组分与树脂之间发生非特异性相互作用。
将含有目标 2F5 单克隆抗体的样品上样至层析柱中。随着样品的加入,抗体逐渐流经层析柱或固定相。
在流动过程中,抗体与固定在固定相上的DFE亲和配体发生可逆相互作用。在这些相互作用中,2F5抗体的互补位(paratope)特异性地结合到DFE配体上的相应表位(epitope)。
使用平衡缓冲液洗涤层析柱,以去除非特异性结合在柱上的不需要的样品成分。随后将洗脱缓冲液通过层析柱。
缓冲液的高离子强度会破坏DFE配体与2F5单克隆抗体之间的相互作用。因此,单克隆抗体以洗脱组分的形式从层析柱中流出。
收集纯化的抗体组分,并将其储存以用于后续应用。
首先,准备 100 毫升含有 2F5 的澄清植物提取物,或来自优选的基于细胞表达系统的上清液(同样含有 2F5)。接下来,按照文本方案中的说明,配制平衡缓冲液和高离子强度洗脱缓冲液。用这些缓冲液冲洗层析系统。
将DFE亲和层析柱安装到层析系统上,并以1毫升/分钟的流速用5个柱体积的平衡缓冲液进行平衡。监测280纳米处的紫外吸光度。然后,以0.5毫升/分钟的流速将80毫升澄清的植物提取物或上清液上样至层析柱,以确保2分钟的接触时间。以2毫升为组分收集穿流组分,用于突破曲线的重建。
若无法立即进行样品分析,将流穿样品储存在 4 摄氏度。随后,用 6 个柱体积的平衡缓冲液洗涤层析柱。在洗涤开始、中间和结束时分别收集样品。用 5 个体积的高离子强度洗脱缓冲液洗脱单克隆抗体 2F5。当 280 纳米处的紫外信号比基线上升 5 毫吸光度单位时,收集 DFE 馏分。