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高效薄层色谱法(HPTLC)是一种先进的分析技术,用于使用细小的吸附剂颗粒作为固定相来分离不同的分析物。此功能有助于高效包装,确保更好的分离。
要使用 HPTLC 分离脂质,请取从中性粒细胞中获得的不同极性脂质的混合物。现在,在有机溶剂中预平衡板以去除任何水蒸气和污垢的痕迹,然后在高温下激活以防止板变质。
将
脂质混合物和标准品作为板底部附近的单独点涂抹。将板转移到充满极性溶剂(流动相)的玻璃室中。让溶剂通过毛细管作用向上移动。
在
移动时,由于它们对极性溶剂的亲和力,更多的极性脂质沿着溶剂前沿迁移。相反,极性较低的脂质被吸附在二氧化硅颗粒上并滞后。在中间极性溶剂中运行脂质,然后在完全非极性溶剂中运行脂质,从而进一步分离脂质。
当溶剂前端达到所需距离时,取出板并干燥。将板暴露于染色试剂中,例如酸化硫酸铜,导致脂质炭化。与有助于初步脂质识别的标准斑点相比,这有助于可视化分离的脂质斑点。
首先,在相应的玻璃室中填充最多 5 毫升的每种溶液。添加任何种类的滤纸以提高每个腔室的运行速度。在第一个运行溶液中预孵育 20 x 10 厘米的 HPTLC 硅胶 60 玻璃板。一旦运行溶液到达板的顶部,在 110 摄氏度下干燥 10 分钟。
将
先前用真空浓缩器干燥后得到的液体沉淀溶解在所需体积的1:1氯仿/甲醇溶液中,并在37摄氏度下孵育15分钟以溶解。接下来,使用尺子和软铅笔标记所需样品数量的加载点,以及至少一个标准品。将第一个跑步解决方案的运行距离标记为大约 4 厘米,第二个运行解决方案的运行距离标记为大约 6 厘米。
要加载样品,请在加载每个新样品之前,在 1:1 氯仿/甲醇中清洗 10 微升注射器 3 次。滴加每个样品 10 微升,尽量将样品集中在尽可能小的区域。将板垂直放入装有运行溶液 #1 的第一个腔室中。确保板与玻璃室壁平行,以达到均匀的迁移速度。
将
板平行于玻璃室的后壁放置在一起,溶剂前部不会走得太远,以确保脂质被有效分离。
一旦溶剂管线达到第一个标记,取出板,干燥,然后将其放入第二个溶液中。对第二个和第三个正在运行的解决方案重复类似的步骤。将板留在溶液中,直到溶剂前端到达板的顶部。然后,取出盘子,在室温下干燥一分钟。
将板放入硫酸铜溶液中七秒钟。盘子彻底干燥后,放入烤箱中以170摄氏度烘烤七分钟。将盘子从烤箱中取出并冷却。