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多聚体蛋白质复合物对于多种生物学过程至关重要。
为了通过多聚体-PAGE 在天然状态下分离蛋白质复合物,需取含有目标复合物的组织裂解液,并将该裂解液上样至用于蓝色天然PAGE的凝胶装置中。
用含有蓝色阴离子染料的碱性电泳缓冲液填充系统,并将其连接至电源。在碱性 pH 条件下,染料分子会结合到蛋白质复合物上,使其整体带负电荷,但不会使其变性。这种带负电荷的完整蛋白质复合物在凝胶中以蓝色条带的形式迁移。
在进行最短时间电泳后,待完整蛋白质迁移至分离胶,切下含有复合物的胶条。将胶条孵育在含有交联剂的溶液中,使其活性基团与邻近蛋白质的氨基发生反应,从而稳定多聚体复合物。
用淬灭试剂替换交联溶液,以终止未反应交联剂的活性。加入SDS(一种阴离子去污剂),使完整的蛋白质复合物带上均匀的负电荷,同时保持其天然大小和组成不变。
将处理后的条带放入新的胶盒中,并重新灌制新的SDS-PAGE凝胶。电泳过程中,带负电荷的交联蛋白复合物向正极阳极迁移,并在凝胶中表现为高分子量条带。
开始此实验步骤前,按照文本方案中的描述准备好蓝色天然聚丙烯酰胺凝胶电泳。将电极连接至电源,以150伏电压在凝胶中进行蛋白质电泳,直至染料条带进入分离胶约2厘米处。此时停止电泳,并断开电源连接。
拆卸电泳装置后,分离凝胶夹心板的玻璃板。移除并丢弃浓缩胶层。
小心地在染料前沿的下边缘稍下方切割凝胶,注意使切口尽可能平滑且笔直。然后,弃去未使用的凝胶部分。修剪掉凝胶条边缘的所有未使用部分。
将条带小心放入盛有10毫升磷酸盐缓冲液的小容器中,通过温和振荡孵育30分钟以达到平衡。平衡后,弃去PBS并更换为另外10毫升PBS。
用移液器将500微升溶于二甲基亚砜中的25毫摩尔DSP加入PBS中,继续以之前的方式混合30分钟。30分钟后,倒出DSP溶液。加入10毫升含2%十二烷基硫酸钠的0.375摩尔Tris-HCl(pH 8.8),以淬灭未反应的DSP。继续旋转孵育15分钟。
在凝胶条进行淬灭的同时,根据标准方法配制SDS-PAGE凝胶溶液,但不要加入聚合试剂。淬灭完成后,将蓝色天然凝胶条恢复至室温,并将其嵌入新的凝胶板中。
为此,请小心拿起凝胶并将其放置在干净的凝胶盒间隔板上。调整胶条方向,使其相对于之前的方向翻转,染料前沿的底部靠近新胶盒的顶部。
将胶条放置,使其上边缘与盖板上边缘对齐。确保染料前沿与玻璃板的水平边缘平行。将切下的胶条一侧紧贴一侧间隔壁,另一侧留出空间用于灌胶,并预留加载蛋白质标准品或蛋白ladder的位置。若胶条底边存在任何参差不齐或不平整的区域,应小心将其切除。
当凝胶条位置正确后,将盖板覆盖在间隔板上。轻轻按压以排出任何滞留的气泡。随后根据制造商的说明继续组装凝胶灌制装置。
放置上层板时,凝胶条有时会发生偏移。可使凝胶条略微悬出上层板边缘,以便用刮刀进行调整,纠正任何偏移。
将聚合试剂加入分离胶缓冲液中,使用血清移液管将其倒入已准备好的胶板中。加胶至距离切下的蓝色天然PAGE胶条下方约2厘米处,以预留浓缩层的空间。随后,在已倒入的胶上方加入100微升正丁醇,并静置30分钟,使分离胶层充分聚合,之后去除正丁醇。
接下来,将聚合试剂加入浓缩胶溶液中。使用刻度移液管将浓缩胶层倒入,以填充胶板中所有剩余的空隙。在倒入浓缩胶时,倾斜胶板,使其充满胶条下方的空间,并避免产生气泡。
当浓缩胶缓冲液填充凝胶条下方的空隙时,逐渐将凝胶夹板恢复至水平位置。继续用浓缩胶缓冲液填充切去凝胶条后旁边的空隙,直至接近溢出。然后,让浓缩层聚合30分钟。
凝胶浓缩层聚合后,将凝胶板从制胶装置中取出,用蒸馏水冲洗,并根据制造商说明书组装电泳装置。
用1× SDS-PAGE电泳缓冲液完全充满内槽,然后将外槽加液至制造商指定的液面高度。在切下的胶条旁边上样蛋白分子量标记物或相应的蛋白标准品。
将电极连接到电源,以120伏电压进行样品电泳。当考马斯亮蓝染料跑出凝胶时,停止电泳并断开电源。使用标准的电转移和基于抗体的蛋白质检测方法分析凝胶。