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从适合的培养基中的一层上皮细胞开始。这些细胞表达整联蛋白——一种跨膜的表面受体。培养基中含有上皮细胞分泌的纤连蛋白——一种糖蛋白。
将金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)——一种革兰氏阳性致病菌——的悬液加入培养皿中。这种细菌的细胞壁上锚定有纤维连接蛋白结合蛋白(fibronectin-binding proteins, FnBPs)。
孵育培养板以启动细菌感染,其中纤连蛋白与细菌的 FnBP 及上皮宿主细胞上的整合素结合。这种三元复合物 FnBP-纤连蛋白-整合素相互作用介导细菌在宿主细胞内的内化。
用溶葡萄球菌酶(lysostaphin)——一种内肽酶——处理细胞并进行孵育。溶葡萄球菌酶可选择性地进入胞外细菌的细胞壁,切割肽聚糖中的五甘氨酸桥,从而裂解胞外细菌,而胞内细菌则不受溶葡萄球菌酶的影响,得以保持完整。
加入蛋白酶以灭活残留的溶葡萄球菌素,防止其在后续步骤中杀死细胞内细菌。
向培养物中加入裂解缓冲液,使宿主上皮细胞破裂,并释放细胞裂解液中的胞内细菌。随后,将含有细菌的细胞裂解液接种至适当的培养平板上并进行培养。
细菌生长并增殖形成菌落,可通过分析这些菌落来评估细菌在宿主细胞内的侵入程度。
在细胞接种前,使用低倍显微镜观察24孔板的每个孔,以确保细胞状态健康且生长情况符合预期。随后,移除并弃去24孔板中的用过的细胞培养基,向含有100%融合度细胞的每个孔中加入500 µL细菌悬液。将细胞在36 °C、5% CO₂条件下孵育2小时。
为了利用改进的酶保护法对细胞内细菌进行定量,请按照文稿中所述配制4倍浓度裂解缓冲液、2% Triton X-100、胰蛋白酶-EDTA、溶葡球菌素储存液及工作液。
接下来,通过将6毫升完全感染培养基加入250微升的溶葡萄球菌素工作液中,配制6.25毫升含溶葡萄球菌素的完全感染培养基。然后,向每孔中加入250微升含溶葡萄球菌素的完全感染培养基,并用手轻轻旋转摇动培养板,使液体均匀分布。
为使溶葡球菌酶杀灭胞外细菌,将细胞在36摄氏度和5%二氧化碳条件下孵育1小时。然后,通过向每孔中加入10 µL浓度为20 µg/mL的蛋白酶K,在室温下孵育2分钟以灭活溶葡球菌酶。
接下来,加入250 µL的4X裂解缓冲液,通过渗透压休克裂解细胞,并在36°C下孵育10分钟。孵育结束后,将细胞裂解液上下吹打数次,以确保细胞完全裂解并充分匀浆。
然后,使用自动螺旋接种仪测定每个孔中的金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)载量,并将琼脂平板在36°C下孵育18至24小时。次日,使用菌落计数器计数菌落数量,以计算每个孔内的金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)载量。