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在骨再生过程中,成骨细胞 - 骨形成细胞 - 被招募到骨折部位,在那里它们增殖并分泌类骨质 - 一种胶原基质。成熟期后,成骨细胞通过钙离子和磷酸根离子的调节沉积使类骨矿化,启动新的骨合成。
为了在体外量化成骨细胞矿化程度,在合适的培养基中获得初级成骨细胞悬浮液。将悬浮液接种到含有多孔骨移植替代盘的多孔板中并孵育。
圆盘充当支架,允许细胞粘附和增殖。
用
含有成骨补充剂的新鲜培养基替换用过的培养基。长时间孵育。成骨补充剂刺激成骨细胞产生胶原基质并随后矿化。
固定后,用茜素红 S、ARS、溶液染色矿化基质。ARS 是一种带负电的染料,与基质中带正电的钙离子结合,形成红色络合物。去除多余的污渍。对板进行成像以检测红色钙沉积物,提示成骨细胞矿化。
接下来,加入氯化十六烷基吡啶,CPC,溶液。CPC 是一种带正电荷的表面活性剂,呈胶束形式,通过其头基与与基质中的钙离子结合的带相反电荷的 ARS 络合,从而促进染料提取到溶液中。
收集并离心溶液。将含有CPC染料复合物的上清液转移到多孔板中,并使用酶标仪测量吸光度。
CPC-染料络合物的吸光度表示基质中钙沉积物的量,这是成骨细胞矿化程度的估计。
将
染色的β-磷酸三钙圆盘转移到新孔中,并用平板扫描仪扫描板以记录矿化。
图像捕获后,加入250微升10%十六烷基吡啶氯化物溶液,摇动15分钟,提取茜素红S染料。接下来,将溶液从孔转移到单独的 1.5 毫升管中,并在室温下以 17,000 倍 g 离心 5 分钟。
在
1.5 毫升管中用 10% 十六烷基吡啶氯化物溶液以 1:10 至 1:20 的稀释比稀释提取物。然后,将 300 微升每个稀释样品转移到 96 孔板的孔中。包括两个仅含有 10% 氯化十六烷基吡啶的空白孔。
接下来,通过用10%十六烷基吡啶氯化物溶液稀释40毫摩尔茜素红S染色溶液,制备7种茜素红S参考标准品,范围为4至400微摩尔,生成标准曲线。
将
300 微升每种标准品装入板中。最后,读取样品、空白和参考标准品在 520 纳米处的吸光度。