蛋白质聚集体形成测定:一种在蛋白酶体抑制剂诱导下检测和定量培养细胞中蛋白质聚集的方法

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细胞中错误折叠蛋白质的去除主要受细胞泛素-蛋白酶体系统的调节,其中蛋白质首先被泛素(一种小调节蛋白)识别和标记,然后转运到蛋白酶体(一种多蛋白复合物)进行水解和清除。

泛素-蛋白体系统活性受损是神经退行性疾病中的常见现象,可导致错误折叠的蛋白质在细胞内积聚,形成具有细胞毒性作用的不溶性蛋白质聚集体。

为了在体外可视化和量化蛋白质聚集,在合适的培养基中获得转导哺乳动物细胞的悬浮液 - 表达荧光标记的突变蛋白,该蛋白采用具有暴露的疏水残基的错误折叠构象。

蛋白酶体抑制剂的浓度递增到黑色多孔板的孔中,以尽量减少成像过程中的背景荧光。将哺乳动物细胞悬液接种到孔中。孵育以使细胞粘附在板底并增殖。

一旦进入,蛋白酶体抑制剂就会与蛋白酶体的蛋白水解位点结合并阻断其活性,导致表达的突变蛋白积累,然后通过其暴露的疏水残基相互作用并形成细胞质聚集体,最终导致细胞死亡。

加入荧光DNA结合染料对细胞核进行染色。对板进行成像。荧光突变蛋白聚集体分散在未染色的细胞质内。

与蛋白酶体抑制剂浓度较低的孔相比,含有较高蛋白酶体抑制剂浓度的孔表现出更高的蛋白质聚集体数与细胞计数之比。

对于化合物转移,在 384 孔储存聚丙烯板上,按标准 1 至 3 稀释系列添加化合物的连续稀释液。然后,使用配备 384 毛细管头的液体处理器,将 0.25 微升蛋白酶体抑制剂分布在空的平底黑色 384 孔测定板上。然后,在这些板上接种 1.5 x 104 个细胞。在37摄氏度和5%二氧化碳下孵育24小时。

在对用蛋白酶体抑制剂处理的细胞系进行成像之前,加入10微升预热的DMEM和染色溶液,并在室温下孵育10分钟。

染色后,通过选择"显微镜"选项卡启动自动显微镜作软件。首先,选择"配置"选项卡,然后选择 20X 物镜和正确的印版类型。

为了允许对不同类型的板进行正确对焦,请确保将"项环"设置为物镜上的正确值。

接下来,选择"曝光 1",将对焦高度设置为"0 微米",然后选择"对焦"。对焦后,曝光相机 1。

要优化曝光平面,请调整对焦高度并单击"拍摄高度"。更改激光功率的曝光时间,使最大像素强度约为 3,000,并保存曝光参数。

选择"实验定义"选项卡。创建布局和子布局。接下来,拖放相关布局、曝光、参考图像、斜剪文件和子布局。然后,保存实验。

最后,选择"自动实验"选项卡并获取图像。对于 2 通道图像,首先选择软件算法来分割主要对象,例如细胞核、细胞质和聚集体。

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Last updated: 18 July 2026