基于荧光微孔板的放线菌酮追踪实验:一种监测荧光标记核内错误折叠蛋白降解动力学的技术

0 次观看2:59 分钟 • July 8th, 2025

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缺乏明确三级结构的细胞核错误折叠蛋白会被小泛素样修饰物(SUMO)和泛素分子标记,从而促进其通过包括泛素-蛋白酶体系统(UPS)在内的蛋白水解系统进行降解。

在多种神经退行性疾病中,泛素-蛋白酶体系统功能障碍导致细胞核内错误折叠蛋白的累积与聚集,进而引发神经元死亡。

研究细胞核内错误折叠蛋白的降解速率 体外用含有荧光标记的错误折叠蛋白编码质粒 DNA 与转染试剂的混合物处理贴壁培养的哺乳动物细胞。

成功转染的细胞表达带有荧光标记的、半衰期较短的错误折叠蛋白,这些蛋白带有核定位信号。当转运至细胞核后,这些错误折叠蛋白会发生SUMO化和泛素化修饰,并被转移至泛素-蛋白酶体系统(UPS)进行蛋白质降解与清除。

孵育后,将培养基更换为含有环己酰亚胺的低荧光培养基。环己酰亚胺是一种可穿透细胞的分子,能够结合核糖体大亚基,阻断蛋白质翻译的延伸阶段,从而抑制进一步的蛋白质合成,有助于研究荧光标记的错误折叠翻译蛋白的降解速率。

使用蛋白酶体抑制剂处理一组孔板,以阻断蛋白酶体活性,导致错误折叠的蛋白质积累。利用微孔板读数仪检测错误折叠蛋白质的荧光信号。

荧光强度随时间推移而下降,表明错误折叠蛋白正在降解。经蛋白酶体抑制剂处理的细胞随时间推移表现出相似的荧光强度,说明错误折叠蛋白的降解受到抑制。

按照文本方案在96孔板中接种并转染HeLa细胞后;转染后20至24小时,观察细胞的GFP表达情况。每孔加入约200微升1×PBS缓冲液,洗涤后吸弃,以去除残留的DMEM培养基。

向一组样品中加入 60 微升低荧光 DMEM 培养基(含 5% FBS)、终浓度为 50 微克/毫升的放线菌酮以及 10 微摩尔的 MG132。

使用荧光酶标仪,每小时检测一次样品板,持续检测 8 至 10 小时。导出数据,并根据文本方案进行统计分析。

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最后更新:15 八月 2026