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重组腺相关病毒(rAAV)是经过基因工程改造的、无包膜的单链DNA病毒,具有作为治疗性基因载体的良好前景。
rAAV 会结合靶细胞膜上的受体,并通过网格蛋白介导的内吞作用进入细胞,从而促进 rAAV 基因组的核内递送及治疗性基因的表达。然而,免疫系统产生的针对 rAAV 的中和抗体可特异性结合 rAAV 表位,干扰其与细胞膜的结合、细胞摄取以及基因转移过程。
为了检测绵羊血清中针对特定重组腺相关病毒(rAAV)的中和抗体,首先获取适当浓度的稀释血清。加入表达人胎盘碱性磷酸酶(hPLAP)基因的重组腺相关病毒(AAV),使中和抗体与AAV结合并将其中和。
将此混合物转移至含贴壁人上皮细胞培养物的多孔板孔中。孵育后,AAV 会经历细胞内吞作用。被转导的细胞表达细胞膜结合型 hPLAP。然而,被中和的 AAV 无法进入细胞。
弃去孔中的培养基。使用多聚甲醛固定细胞。加入预热的缓冲液,并将细胞加热以灭活内源性细胞碱性磷酸酶;人胎盘碱性磷酸酶(hPLAP)对热灭活具有抗性。
加入人胎盘碱性磷酸酶(hPLAP)底物——溴氯吲哚磷酸盐(BCIP)和硝基蓝四氮唑(NBT)。hPLAP 去磷酸化 BCIP,后者发生二聚化反应,形成蓝色中间产物。释放的氢离子还原 NBT,生成不溶性紫色沉淀物。通过成像观察转导细胞周围出现的紫色沉积物。
紫色区域比例较低表明腺相关病毒(AAV)中和抗体浓度升高。
第一天开始接种HT1080细胞,将细胞用预热的完全DMEM培养基稀释至浓度为1 × 105 个细胞/mL。
然后,将细胞以每孔100微升的体积接种到透明的96孔平底板中,每孔细胞浓度为1 × 104个细胞。将板置于37摄氏度、含5%二氧化碳的环境中孵育过夜,孵育时间为16至22小时。
第二天,使用预热的完全DMEM在1.5毫升微量离心管中对目标血清样本进行系列稀释。
向每管稀释的血清样品中加入 66 微升浓度为每微升 7.5 × 106 拷贝病毒基因组的工作液。用移液器吹打混匀病毒与血清的稀释液,然后将含有病毒/血清混合物的离心管置于 37 摄氏度、含 5% 二氧化碳的培养箱中孵育 30 分钟,以使可能的中和反应发生。
30分钟后,用移液器将100微升病毒/血清混合物加入含有每孔1 × 104个细胞的96孔板的每个孔中,然后用铝箔包裹该板,于37摄氏度、5%二氧化碳条件下孵育过夜,孵育时间为16至24小时。
第3天,在通风橱中使用真空装置吸去96孔板各孔中的培养基,注意不要破坏贴壁的细胞,然后向每孔加入50微升4%多聚甲醛。用铝箔包裹板子后,于室温下静置10分钟。
随后,在室温下用 200 微升 PBS 洗涤细胞两次,并吸弃液体。第二次洗涤后,向每孔中加入 200 微升预热的 PBS,用铝箔包裹培养板,于 65 摄氏度孵育 90 分钟,以变性内源性碱性磷酸酶活性。
孵育后,向每孔中加入50 µL新配制的溶解BCIP/NBT溶液,将包好的培养板在室温下避光孵育2至24小时。随后,使用光学显微镜相机的4倍物镜拍摄每孔的图像,确保所有检测均采用相同的曝光、白平衡和光照条件。