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当暴露于有害环境条件时,一部分细菌会进入低代谢活性状态,从而逃避不利影响。这类被称为持留菌的细菌能够耐受短时间内高浓度抗生素的作用。
为了研究渗透保护剂(小分子有机溶质)对细菌持留现象的影响,首先需获得处于指数生长期的细菌细胞培养物,其中预先存在的持留菌数量低于检测限,并悬浮于培养基中。
接下来,将悬浮液转移至含有渗透保护剂的微阵列板孔中。保留一组不含渗透保护剂的孔作为对照。用透气膜密封微阵列板,以允许气体快速扩散,促进细胞生长,并进行孵育。
培养基中适当浓度的渗透保护剂会诱导产生渗透压应激,促使部分细胞将自身细胞代谢从快速生长重新编程为缓慢生长,从而形成持留细胞。
现在,将经渗透保护剂处理的细胞和对照细胞转移至含有抗生素的持留菌检测板中。密封持留菌检测板并进行培养。
在抗生素存在下,正常细胞会发生死亡,而耐受抗生素的持留细胞则能够存活。最后,取少量细胞,用缓冲液进行连续稀释后点样于不含抗生素的琼脂平板上,孵育平板。
在没有抗生素的情况下,持留菌会恢复生长并增殖,形成菌落。计数琼脂平板上的菌落数量。
与无渗透保护剂对照组相比,抗生素处理后菌落数量更多,表明渗透保护剂对持留菌的形成具有促进作用。
首先准备微阵列细胞培养物。
将250微升对数生长期的细胞转移至50毫升离心管中的25毫升新鲜改良LB培养基中。然后,轻轻混匀细胞悬液,使其均匀。
将稀释后的细胞悬液转移至无菌的50毫升储液槽中。使用多通道移液器,将150微升细胞悬液分别加入含有不同化学物质的微孔阵列板的每个孔中。微阵列也可根据文本稿件中描述的方法手动制备。
用透气密封膜覆盖微孔板,并在37摄氏度、250转/分钟的摇床中孵育24小时。
为制备持留菌检测平板,取一个50毫升离心管,加入25毫升含5微克/毫升氧氟沙星的改良LB培养基,混匀后转移至无菌储液槽中。
将190微升改良的LB培养基转移至通用平底96孔板的每个孔中。24小时培养后,从摇床中取出微阵列,将10微升细胞培养物从微阵列转移至含有含氧氟沙星改良LB培养基的持留菌检测板的各孔中。
从持留菌检测板中取10微升细胞悬液,使用圆底96孔板和多通道移液器,在290微升PBS溶液中连续稀释3次。然后,将所有梯度稀释后的细胞悬液各取10微升点样于不含抗生素的新鲜琼脂平板上。
用透气性封膜覆盖持留菌检测板,并在37摄氏度、250 RPM条件下于摇床中孵育6小时。
6小时孵育后,重复进行系列稀释并在琼脂平板上点样。将琼脂平板在37摄氏度下孵育16小时,然后计数菌落形成单位(CFU)。利用抗生素处理前以及处理6小时后的CFU水平,计算每个孔中的持留菌比例。
在OFX处理前的CFU计数也有助于评估渗透保护剂对E. coli存活率的影响。