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两种细菌菌株之间的种内竞争导致抑制菌株释放毒性效应分子,从而杀死目标菌群。
为了观察两种革兰氏阴性细菌菌株之间的竞争性相互作用,首先将抑制菌株和靶标菌株以相等数量进行共培养。
两种菌株均经过基因改造以表达不同颜色的荧光蛋白,以便在成像过程中直观区分。浓缩培养物以最大化两种细菌菌株之间的细胞间接触。将混合培养物点样到置于培养皿底部的盖玻片上。
将凝固的琼脂糖垫放置在该位置上,使细菌固定,并用另一盖玻片覆盖。孵育以促进细菌生长,模拟细菌密集的条件。
抑制性菌株的细胞包膜含有一种特化的分泌系统——VI型分泌系统(T6SS)。该系统由膜复合物、基板以及被可收缩鞘包裹的内管组成。
当检测到接触时,抑制菌株会激活其VI型分泌系统(T6SS),导致鞘结构收缩并推出管状结构,最终穿透靶细菌的细胞膜。这有助于将效应分子递送至靶细菌内,导致其死亡。
使用荧光显微镜成像以识别发出不同荧光的细菌菌株。目标细菌呈圆形形态且其数量减少,表明抑制性细菌成功杀灭了目标细菌。
测定并记录所有样品在600纳米处的光密度。通过用LBS培养基稀释菌液,将每个样品的光密度归一化至1。
将两种竞争菌株等比例混合,即各取30微升已标准化的菌株加入至已标记的1.5毫升离心管中。将混合菌株培养物涡旋振荡1至2秒。对每个生物学重复和处理组均进行竞争菌株混合,共制备4个混合菌株管。
通过离心将每种混合培养物浓缩三倍,以确保在共孵育期间具有足够密度的相互作用细胞进行接触依赖性杀伤。弃去上清液。将每种沉淀重悬于20微升LBS培养基中,并对每个样品进行浓度调整操作。
若在倒置显微镜上进行成像,首先将 2 微升混合培养物滴加到 35 毫米培养皿的 #1.5 盖玻片底部,然后将琼脂糖垫置于共孵育液滴上方。在琼脂糖垫上放置一个 12 毫米圆形玻璃盖玻片。对剩余的 3 份混合培养物重复上述滴加及盖玻片放置操作,最终共获得 4 个待成像的培养皿。
继续操作前,将载玻片置于实验台约5分钟,使细胞沉降到琼脂垫上,以避免成像过程中细胞移动。
首先使用微分干涉差(DIC)观察细胞,以尽量减少光漂白效应。根据单个细菌细胞的平均大小,选用100倍油镜物镜。调整各通道的曝光时间和采集参数,以实现最低背景信号的检测。选择至少5个视野,并在每个相应的通道中采集图像。