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成体体细胞可通过遗传重编程获得诱导性多能干细胞(iPSCs),这类细胞具有类似干细胞的未分化状态和增殖能力。
将人iPSCs诱导分化为巨噬细胞——一种能够吞噬病原体和细胞碎片的白细胞——首先使用具有非细胞黏附表面的培养板。
加入含有骨形态发生蛋白、干细胞因子和血管内皮生长因子的培养基。接种诱导多能干细胞并进行培养。
非黏附表面可防止iPSC贴壁,使细胞保持悬浮状态,从而促进其聚集成三维的胚状体(EBs)。生长因子可启动EBs内iPSC向中胚层谱系细胞的分化。
将已分化的拟胚体转移至离心管中,静置使其自然沉降。用含有白细胞介素-3(IL3)和巨噬细胞集落刺激因子(CSF1)的新鲜培养基重悬拟胚体。将拟胚体接种至明胶包被的细胞培养板上。
明胶——一种细胞外基质蛋白——可促进拟胚体的贴附。IL3 刺激拟胚体分化为造血干-祖细胞,进而生成髓系细胞。CSF1 支持髓系细胞的增殖,并促进其分化为巨噬细胞前体,这些前体细胞被释放后悬浮于培养基中。
收集悬浮细胞并离心。用添加了CSF1的培养基重悬细胞。
将细胞接种于未包被的培养皿上。
CSF1 可诱导巨噬细胞前体终末分化为功能完整、贴壁的成熟巨噬细胞。
在第0天开始分化过程时,向超低吸附6孔板的两个孔中各加入2.25毫升的第一阶段培养基。然后,对于一个汇合度达到180%的iPSC 6孔板孔,将维持培养基更换为1.5毫升的第一阶段培养基。使用新的细胞传代工具切割细胞集落。用移液器将切割后的集落转移至超低吸附6孔板的两个孔中。
第2天,向含有第2天拟胚体的6孔板中加入0.5毫升hESC-SFM培养基,以调整细胞因子浓度。
第4天,用0.1%明胶包被6孔组织培养板中的4个孔。孵育至少10分钟后,去除明胶,并加入2.5毫升阶段2培养基。
从6孔板的两个孔中收集形成的拟胚体,并将其放入50毫升离心管中。静置使拟胚体依靠重力沉降至管底。随后,小心吸除管中的培养基,并将拟胚体重悬于2毫升阶段2培养基中。
将10至15个拟胚体转移至含有2.5毫升阶段2培养基的明胶包被孔中,在37°C、5%二氧化碳条件下培养。持续两到三周,每三至四天更换一次培养基。
EB的接种至关重要。若EB数量少于10个或多于15个,或分布不均,均可能导致巨噬细胞产量降低。
经过两到三周后,类胚体开始释放非贴壁的造血细胞进入悬浮液中。使用40微米滤网将这些细胞收集到50毫升离心管中,然后补充新鲜培养基。将造血细胞悬浮液在200 × g 条件下离心3分钟。
将造血细胞重悬于第3阶段培养基中,然后以每毫升0.2 × 106的密度接种细胞。每五天更换一次第3阶段培养基。
培养9至11天后,巨噬细胞将完全分化并具备完整功能。