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肥大细胞——一种胞质颗粒中含有大量炎性介质的白细胞——在先天性和适应性免疫反应中发挥重要作用。
为了从腹膜腔(一种容纳腹部器官的充满液体的空间)中分离结缔组织型肥大细胞,取一只仰卧位固定的已处死小鼠。沿纵轴切开至胸骨,暴露腹壁。
腹膜腔位于腹壁下方,内含液体,其中含有多种免疫细胞,包括巨噬细胞、淋巴细胞、多形核白细胞和肥大细胞。
通过腹腔灌洗(即抽吸腹腔内物质)分离细胞时,将冰冻的培养基注入腹腔,注意不要刺破器官并避免血液渗漏。低温培养基有助于维持细胞活性。
轻轻振荡小鼠足够长的时间,使免疫细胞与培养基充分混合。将一个空的注射器插入腔内,缓慢吸取培养基——回收大部分注入的液体,以获得更高的细胞得率。
将细胞悬液转移至收集管中。离心以使细胞沉淀形成沉淀物。弃去上清液。用适当的培养基重新悬浮沉淀物。
将细胞接种并置于生理条件下孵育,使细胞贴附于培养容器。加入可与肥大细胞表面受体结合的特定细胞因子,诱导细胞增殖。
增殖的细胞已可用于下游检测。
开始此操作时,先用70%乙醇喷洒已处死的小鼠,并用镊子将其固定在泡沫板上,腹面朝下。使用钝头剪刀剪除小鼠腹部的皮肤,注意避免损伤腹膜腔。
接着,将27号针头小心插入腹膜,向腹腔内注射7毫升冰冻的RPMI培养基。注意不要刺穿任何器官,选择附睾脂肪区域的位置进针,以降低器官穿孔的风险。
注射后,轻轻振荡小鼠1分钟,使腹膜细胞脱落进入RPMI培养基中。振荡力度不宜过大,以免损伤内脏器官并导致血液污染腹腔。随后,更换新的20号套管针,重复使用该注射器。
将泡沫块倾斜并轻轻在实验台上敲击,使内脏偏向一侧,以便从另一侧更方便地吸取培养基。随后,将一支20号针头(斜面朝上)插入腹腔,轻柔缓慢地吸取腹腔液体,以避免内脏堵塞针头。
尽可能收集更多的液体。然后,将针头从注射器上取下,将收集到的细胞悬液转移至预冷的收集管中,并置于冰上。若样本管中可见血液污染,则弃用该样本管。
将含有纯净细胞悬液的离心管在300 × g 条件下离心5分钟。在无菌操作台内,吸除上清液。用冷的PMC培养基重悬样品沉淀,并将细胞悬液转移至25平方厘米的细胞培养瓶中。
随后,将生长因子 IL3 和 SCF 分别加入至终浓度为 10 纳克/毫升和 30 纳克/毫升。将细胞在 37 摄氏度下孵育约 48 小时,直至进行下一步操作。