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感染期间,活化的淋巴细胞会释放炎性介质——细胞因子,以引发免疫反应。
为了定量感染组织中的炎症介质,首先需要制备含有源自人肺组织的免疫细胞的细胞悬液。
将细胞与Haemophilus influenzae(一种呼吸道致病菌)共同孵育。该细菌表面抗原与吞噬性免疫细胞上的模式识别受体相互作用,从而启动细菌的内化、加工成较小的肽段,并由主要组织相容性复合物分子呈递这些肽段。
吞噬细胞上的抗原-MHC-II 分子通过T细胞受体与T淋巴细胞结合,同时伴随共刺激受体的相互作用,从而导致T淋巴细胞活化并产生促炎性细胞因子。
使用高尔基体阻断剂处理细胞,抑制细胞因子的释放,从而导致细胞因子在细胞内积聚。用封闭缓冲液洗涤细胞,以封闭非特异性结合位点。
使用可特异性结合人T淋巴细胞表面标志物的荧光素标记抗体混合物对细胞悬液进行染色,以实现对淋巴细胞的标记。
固定细胞,并使用成孔型表面活性剂对细胞进行透化处理。将透化后的细胞与荧光标记的抗细胞因子抗体孵育,使抗体进入细胞并与特定的细胞因子结合。
通过流式细胞术,检测标记淋巴细胞内的细胞因子荧光信号,该信号与细菌感染引起的炎症介质产生相关。
将约20至40克的肺叶切除样本切成3至5立方毫米的组织块。将其放入无菌的50微升腔室中,并使用适当的组织分散器对组织进行机械解离。组织解离后,按所示方法裂解红细胞,并将细胞重悬于无菌RPMI培养基中。然后,通过100微米的无菌尼龙滤网过滤细胞,并使用台盼蓝排斥法计数活细胞数量。
进行感染实验时,将肺细胞重悬于RPMI培养基中,每管终浓度为每毫升400万个细胞。然后以每个细胞100个细菌的感染复数(MOI)感染细胞。将管盖松开半圈,以允许管内气体交换。将细胞置于管式旋转仪中,在37摄氏度、12 RPM转速下旋转孵育。刺激1小时后,加入布雷菲德菌素A(Brefeldin A),以阻止细胞因子向胞外分泌,并继续在旋转条件下孵育细胞悬液16至22小时。
第二天,用含有1%牛血清白蛋白和0.01%叠氮化钠的500 µL PBS洗涤细胞悬液。接着,加入针对特定人淋巴细胞表面标志物的抗体,4°C避光孵育1小时。然后,用PBS洗涤细胞,并按照之前所述方法进行固定和透化处理。随后,加入细胞内细胞因子染色抗体,孵育1小时。再次洗涤细胞后,将细胞重悬于100 µL PBS中,用于流式细胞仪检测。