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从成年个体开始 果蝇 黑腹果蝇 注射了的果蝇 E. coli在注射后的预定时间点,将麻醉的果蝇转移至预冷的微量离心管中,置于冰上以降低其代谢活性。
加入缓冲液并匀浆果蝇,以破坏组织,释放大肠杆菌(E. coli)和内源性肠道微生物群。
将每份含有大肠杆菌(E. coli)的果蝇匀浆转移至多孔板的孔中。其余孔中加入缓冲液。对含有大肠杆菌(E. coli)的匀浆进行系列稀释。
从最低稀释度开始,将每个孔中的稀释匀浆悬液分别点样于营养琼脂平板上。让点样液滴充分吸收至琼脂中。将平板置于恒温培养箱中过夜培养,以使大肠杆菌(E. coli)增殖并形成可见的菌落。培养时间至关重要,需严格控制以避免果蝇内源性肠道微生物菌落的形成。
从稀释后菌落可计数且无重叠的样品中,计数每只果蝇的 E. coli 菌落数。计算注射后不同时间点起始匀浆液中的菌落形成单位——即可存活细菌载量。
随着时间推移,E. coli 菌量减少表明果蝇免疫系统清除了细菌。
将部分感染的果蝇置于预冷的微量离心管中,每管加入 250 µL PBS,用研杵充分匀浆。随后使用螺旋接种仪将匀浆液接种至 LB 琼脂平板上。
或者,通过连续稀释法将匀浆接种:将每份果蝇匀浆转移至96孔板的第一行,其余各行每孔加入90微升PBS。使用多通道移液器,从含有果蝇匀浆的第一行各孔中吸取10微升液体,加入第二行相应孔中。
上下吹打至少10次以充分混匀匀浆液,然后取10 µL匀浆液转移至下一排。使用剩余各排重复此操作。从最底行开始,使用多通道移液器从每个孔中吸取10 µL,接种到LB平板上。
确保将样品点样成互不接触的独立斑点。重复此步骤,直至从每行的所有孔中取样完毕,并按稀释度从高到低的顺序将样品点在LB平板上。无论采用何种涂布方法,均需注意避免菌落过度生长,以保证菌落保持细小且分离清晰。
从培养箱中取出培养皿,此时实验用细菌已长出可见菌落,但污染菌的菌落尚未形成。 果蝇 肠道微生物群大约在24小时后变得可见。
对于螺旋平板,使用自动菌落计数器计数生长的菌落,该计数器可根据平板上菌落的数量和位置,估算每毫升匀浆液中的细菌载量。
对于点种平板,手动计数每只果蝇在含有30至300个菌落的稀释度下的菌落数,并计算原始匀浆液中每毫升的细菌数量。