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某些革兰氏阴性细菌病原体通过接触宿主细胞,并利用分泌系统注入效应蛋白,从而促进细胞侵入。
向哺乳动物细胞递送效应蛋白 体外将哺乳动物细胞移液至预冷的比色皿中。加入链霉亲和素结合肽标记的细菌效应蛋白,并混匀。
进行电穿孔。在电穿孔过程中,短暂的电脉冲会破坏宿主细胞膜的脂质双层,形成瞬时孔隙,从而促进效应蛋白进入细胞。将细胞接种到含有培养基的玻璃板上,使细胞得以恢复并贴附于板面。随后孔隙重新闭合,将蛋白截留在细胞内。
细胞回收后,对细胞进行固定和透化处理,以使抗体能够接触到细胞内靶标。使用含蛋白质的封闭液孵育,以防止抗体非特异性结合。加入可特异性结合细胞内效应蛋白上链霉亲和素结合肽标签的一抗。
加入与效应蛋白上结合的初级抗体相连接的荧光标记二抗,以实现可视化。添加荧光素偶联的小麦胚芽凝集素和DAPI,分别用于染色细胞膜糖蛋白和DNA。
使用共聚焦显微镜观察效应蛋白、细胞膜和 DNA 的荧光信号。
成功电穿孔的细胞表现出明显的效应蛋白胞内荧光信号,提示其在细胞内的定位。
开始此操作步骤时,将400微升细胞悬液转移至预冷的比色皿中,然后加入20微克选定的蛋白质,使其终浓度达到每毫升50微克。轻轻弹动比色皿约10次以混匀,避免损伤细胞。随后,用纸巾擦干比色皿外壁,防止电穿孔仪中发生电弧放电。
将样品放入电穿孔仪中,设置参数为0.3千伏,持续1.5至1.7毫秒。电穿孔后立即轻轻弹击比色皿约10次,充分混匀样品,随后进行固定与免疫荧光染色或亲和纯化。
电穿孔后恢复4小时,用无菌PBS洗涤细胞。随后,在室温下用100%甲醇固定细胞2分钟。接着,再用无菌PBS洗涤细胞三次。用含0.4% Triton X-100的PBS处理细胞15分钟以进行透化。根据目标蛋白的表位及其位置,调整透化时间和Triton X-100的浓度。然后,在室温下用含5% BSA的PBS封闭细胞1小时。
随后,用 PBS 洗涤三次。接着,在抗体结合溶液中加入一抗,于 4 摄氏度轻轻振荡孵育过夜。
第二天,用 PBS 将细胞再清洗四次。然后,在抗体结合溶液中加入相应荧光标记的二抗,与细胞孵育。根据需要添加其他染料,例如 5 微摩尔与 Alexa 647 偶联的小麦胚芽凝集素(WGA),或 DAPI,在室温下避光孵育一小时。随后,用 PBS 将细胞清洗五次,置于 4 摄氏度避光保存,直至准备成像。