0 次观看 • 3:53 分钟 • July 8th, 2025
取一个含贴壁上皮细胞单层的多孔板,更换为无血清培养基,以避免血清蛋白的干扰。孵育后,移除培养基,用缓冲液洗涤细胞,加入含有纤连蛋白的预冷无血清培养基,在较低温度下孵育。
玻璃粘连蛋白的N端RGD结构域与上皮细胞表面的整合素受体结合。较低温度会抑制玻璃粘连蛋白-整合素复合物的细胞内化。
在整合素受体饱和后,移除培养基。用缓冲液洗涤以去除过量的玻璃粘连蛋白,因为残留的玻璃粘连蛋白可能影响细菌对依赖玻璃粘连蛋白的整合素的结合。
加入流感嗜血杆菌 f 型(Haemophilus influenzae type f,简称 Hif)悬液,该菌为革兰氏阴性细菌病原体。孵育。
Hif 表面的蛋白 H 与玻璃粘连蛋白的 C 末端结合,促进 Hif 黏附于上皮细胞并随后被内化。
移除培养基,并用缓冲液洗涤以去除未结合的 Hif。使用细胞解离酶收集细胞。加入含血清的培养基以终止酶促反应。将细胞悬液转移至含有玻璃珠的玻璃管中。振荡以裂解细胞,释放内化及表面附着的细菌。
用无血清培养基稀释裂解液,并接种于巧克力琼脂平板上。孵育以使Hif形成菌落。计数菌落。
菌落数量增多表明在存在连蛋白的情况下,Hif 对上皮细胞的黏附能力增强。
按照文本方案所述培养 A549 上皮细胞。在 37 摄氏度下用胰蛋白酶消化细胞并洗涤一次后,使用含有 5 微克/毫升庆大霉素的完全培养基将细胞悬液稀释至每毫升 5,000 个细胞。
在细菌感染前,将孔板中的培养基更换为F12培养基,并在37摄氏度下孵育过夜。用1毫升PBS在室温下洗涤细胞单层三次。然后将培养板置于冰上,加入含有10微克/毫升连纤蛋白的预冷F12培养基200微升。
将培养板在 4 摄氏度孵育 1 小时后,用移液器弃去溶液,并在室温下用 1 毫升 PBS 洗涤细胞层两次。每孔加入 100 微升在 F12 培养基中新鲜培养的 Hif 野生型菌液。在 37 摄氏度孵育培养板 2 小时。然后用移液器吸去培养基,用 PBS 将 A549 上皮细胞洗涤三次,每孔加入 50 微升细胞解离溶液,随后在 37 摄氏度孵育 5 分钟。
接着,每孔加入 50 微升 F12 完全培养基以终止酶促反应。将每孔中的上皮细胞转移至含有 4 颗玻璃珠的 6 毫升玻璃管中。在室温下涡旋振荡 2 分钟以裂解细胞。
将细胞裂解液稀释100倍后,取10微升稀释样品接种于巧克力琼脂平板上。在37摄氏度下过夜培养后计数菌落。
本研究探讨了Hif通过玻璃粘连蛋白介导的流感嗜血杆菌f型(Hif)对上皮细胞的黏附作用。该方案概述了制备上皮细胞单层以及通过菌落计数评估细菌黏附的步骤。
该检测通过测量细菌经由连丝蛋白介导机制对上皮细胞的黏附,实现对宿主-病原体相互作用的定量评估。该方法通过降低黏附通路相关机制假说的风险,支持抗感染药物研发中的靶点验证。该技术可为筛选能够干扰宿主-病原体结合的化合物或生物制剂提供可靠的预测依据。
该检测适用于早期发现阶段,在临床前药效测试之前,通过测量靶标介导的病原体-宿主相互作用来指导先导化合物的鉴定。
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最后更新:22 八月 2026