0 次观看 • 3:14 分钟 • July 8th, 2025
取一株金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的培养物,该致病菌可分泌白细胞毒素——一种由单体S组分和F组分构成的成孔毒素。
离心收集细胞,对上清液进行连续稀释。将含有杀白细胞素的上清液转移至含有多形核白细胞(PMNs)的微孔板中,孵育。
S 组分结合到中性粒细胞(PMN)上的特定跨膜受体,随后与 F 组分发生异源寡聚化,插入细胞膜,导致孔道形成。
孔道导致细胞内钾离子减少,从而激活含吡啶结构域的NLR家族蛋白3(NLRP3)。
NLRP3 与含有半胱天冬酶募集结构域的凋亡相关斑点样蛋白(ASC)结合,进而招募前体半胱天冬酶-1,形成炎性小体。
自剪切将前体caspase-1转化为活化的caspase-1,从而触发细胞死亡。
在规定的时间点收获细胞。加入碘化丙啶(propidium iodide 或 PI),该染料可透过死细胞的破损膜进入细胞并与 DNA 结合,产生荧光。
采用流式细胞术定量分析经碘化丙啶(PI)染色的细胞,以评估两种杀白细胞素浓度及孵育时间的细胞毒性效应。
实验前一天,在适当的培养基中接种 S. aureus,于37摄氏度摇床培养箱中过夜培养。将过夜培养的细菌用新鲜培养基按1:100比例稀释,对 S. aureus 进行传代培养。在37摄氏度条件下振荡培养,直至细菌达到早期稳定生长期。培养5小时后,取1毫升传代培养的 S. aureus 转移至1.5毫升微量离心管中,在室温下以5000 g 离心5分钟。
离心后,吸除上清液。将吸出的上清液通过0.22微米针头滤器过滤至新的1.5毫升微量离心管中,并置于冰上。用冰上预冷的培养基对上清液进行系列稀释,该培养基用于培养Staph aureus。按照前述方法,将上清液样品或仅培养基(分别作为阴性对照和阳性对照)轻柔地加入含有PMNs和冰的96孔板的各个孔中。
轻轻摇动培养板以混匀上清液并分布到各孔中,在 37 摄氏度下孵育。在预定时间点,将培养板从培养箱中取出,置于冰上。向每根流式细胞术管中加入 300 µL 含有 1 µL 碘化丙啶的预冷 DPBS。将样品转移至置于冰上的流式细胞术管中。对于阳性对照孔,在转移至流式细胞术管前,向样品中加入 20 µL 10% 的 Triton X。使用流式细胞术分析中毒性 PMN 的碘化丙啶染色情况。
本研究探讨了金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)产生的毒素——白细胞毒素(leukocidin)对多形核白细胞(PMNs)的细胞毒性作用。该作用机制涉及在PMNs中形成孔道,导致细胞死亡,并通过流式细胞术进行评估。
对细菌胞外蛋白介导的人中性粒细胞(PMNs)毒性的定量评估,能够在感染性疾病靶点验证中实现机制性风险排除。该检测方法可为评估病原体的免疫逃逸策略提供预测信心,支持抗感染药物研发早期阶段的产品线决策。结合基于流式细胞术的细胞毒性读数,有助于加强从发现到临床前模型选择的转化连续性。
该检测位于从发现到临床前研究的连续过程中,连接了抗感染项目中的作用机制靶点验证与转化模型选择。
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最后更新:29 八月 2026