0 次观看 • 3:30 分钟 • July 8th, 2025
在体视显微镜下观察胃类器官,即由分化的胃细胞和干细胞组成的三维细胞结构。
引入一个装有幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)的显微注射器,该菌是一种胃部病原体。
将针头插入目标类器官并注射细菌悬液。
观察管腔内形成浑浊的溶液。
H. pylori 利用其表面的一种特异性黏附素蛋白与胃细胞受体结合,从而建立细菌与宿主细胞之间的稳定相互作用。
这种相互作用会触发细菌分泌菌毛的伸长,菌毛是一种大型的管状结构,可向宿主细胞膜方向延伸。
H. pylori 利用分泌菌毛将毒力因子(包括细胞毒素相关基因A蛋白或CagA)注入宿主细胞。
进入细胞后,CagA 会被宿主细胞激酶磷酸化。
磷酸化的CagA会失调多种细胞内信号级联反应,改变宿主细胞功能,促进癌变转化。
收集感染的类器官以进行进一步分析。
开始类器官显微注射前,按照标准操作流程收获H. pylori细菌,并用基础培养基洗涤。根据光密度测定结果确定细菌数量后,将菌液用基础培养基稀释至每毫升含1 × 109个细菌。
使用显微拉针仪将玻璃毛细管拉成两根注射针,并存放在洁净的培养皿中。然后用镊子折断其中一根注射针的尖端,形成一个宽度约为10微米的开口。
在无菌培养罩内的体视显微镜下操作,将注射针插入注射 holder 中,并固定到显微操作仪上。用注射针吸取约 10 µL 细菌溶液。然后,将含有胃类器官的 4 孔细胞培养板置于体视显微镜下。
使用显微操作仪进行导航,将针头移至类器官附近。迅速将针头插入类器官,并向类器官中心注射约 0.2 µL 的细菌溶液。熟练操作后,可在 5 分钟内完成一个孔中约 30 个最大类器官的注射。将注射后的类器官置于细胞培养孵箱中,孵育所需时间。
初学者在使用该技术时常会遇到困难,原因是难以高效地对类器官进行靶向操作。小鼠胃类器官呈囊状生长,最容易靶向,因此使用染料等对小鼠胃类器官进行注射,可作为该技术的良好练习方法。
本文介绍了一种将幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)显微注射到胃类器官中的方法,用于研究细菌与宿主之间的相互作用。该技术可实现对幽门螺杆菌(H. pylori)如何影响宿主细胞功能并促进癌变过程的观察。
该方法能够在生理相关的人体组织模型中对幽门螺杆菌毒力因子进行机制性去风险评估,支持胃肠道肿瘤学和感染性疾病研发管线中的靶点验证。通过定量分析CagA的转位及下游信号通路的改变,该方法为抗毒力治疗策略提供了预测性依据。基于类器官的感染模型将基础生物学发现与胃癌风险分层相关的宿主-病原体相互作用的临床前评估有效衔接。
该技术可融入从靶点验证到先导化合物优化的整个发现流程,能够在临床前药效学测试之前,对细菌毒力因子的作用机制进行深入探究。
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最后更新:22 八月 2026