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将红细胞耗尽的脾细胞放入含有细胞渗透性钙敏感荧光染料 Indo-1 AM 的缓冲液中。
细胞内酯酶将 Indo-1 AM 切割成膜不透水的 Indo-1,后者与钙离子结合,将 Indo-1 的荧光信号从蓝色变为紫色。
引入荧光团偶联的抗原特异性抗体,这些抗体与细胞上的相应抗原特异性结合。
使用流式细胞术,识别荧光团标记的 B 细胞并测量它们的 Indo-1 紫蓝荧光比。
现在,用抗原脂质体处理细胞,该脂质体包含与脂质体双层偶联的IgM Fab片段。
B 细胞受体与脂质体偶联抗原结合,激活相关的细胞质酪氨酸激酶并触发磷脂酶-C γ-2 激活。
活化的磷脂酶-C 裂解膜磷脂、磷脂酰肌醇 4,5-二磷酸,产生第二信使,包括肌醇 1,4,5-三磷酸或 IP3。
IP3 与内质网上的 IP3 门控钙通道结合,将钙离子释放到细胞质中。
这些钙离子结合未结合的 Indo-1 分子,增加紫荧光。
标记的 B 细胞中较高的 Indo-1 紫蓝色荧光比证实了它们被抗原脂质体成功激活。
为了监测B细胞对抗原脂质体激活的反应,将1.5 x 107脾细胞重悬于钙通量上样缓冲液中,并向细胞中加入1.5微摩尔的Indo-1,将管中的溶液反转数次以混合。在37摄氏度避光下水浴孵育30分钟后,加入5倍体积的钙通量上样缓冲液,并离心Indo-1标记的细胞。
对于B细胞门控,用抗CD5和抗B220抗体在4摄氏度的0.5毫升上样缓冲液中染色细胞20分钟,避光。在孵育结束时,在新鲜的钙通量上样缓冲液中洗涤细胞,并将沉淀重悬于每毫升新鲜钙通量运行缓冲液的1至2 x 107个细胞,以储存在避光的冰上,直到分析。
接下来,将 0.5 毫升细胞加入带盖的 5 毫升圆底聚苯乙烯管中,并在水浴中将细胞加热至 37 摄氏度。3至5分钟后,将试管转移到连接到循环水浴的37摄氏度水套室中,并将试管运行在流式细胞仪上的水套中。
每秒收集 5,000 至 10,000 个事件后,让细胞稳定 15 至 30 秒,然后重新启动数据采集,收集数据至少 10 秒以建立背景读数。在10秒标记处,快速从流式细胞仪中取出试管,并加入适当实验浓度的抗原脂质体。然后,脉冲涡旋细胞,并在细胞仪上读取管子再读数 3 至 5 分钟。