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采用珠载脂质双层(BSLBs),即表面包被脂质双层并偶联抗原肽-MHC复合物、黏附分子和共刺激分子的二氧化硅微珠,作为合成抗原呈递细胞。
与T细胞共孵育。
TCR 与 BSLB 上的抗原肽结合,同时在共刺激信号的协同下形成免疫突触,从而激活 T 细胞。
这种结合会触发细胞内信号级联反应,诱导肌动蛋白重排,并在突触处形成含有黏附分子和信号分子的微簇结构。
T细胞释放富含TCR、共刺激分子和溶细胞颗粒成分的跨突触小泡进入突触,与BSLBs结合。
逐渐降低共培养物的温度,以分离BSLBs与T细胞。
离心并弃去上清液。使用含蛋白质的缓冲液封闭表面的游离结合位点。
离心并用荧光素标记的抗体处理BSLBs和T细胞,这些抗体可结合特定的信号分子和共刺激分子。
利用流式细胞术分析 BSLB 和 T 细胞的荧光信号,以定量突触输出。
将每孔500,000个BSLB重悬于200 µL HBS/HSA缓冲液中。将每孔100 µL BSLB转移至新的U型底96孔板中以制备复孔,使每孔BSLB的最终数量为250,000个。在室温下以300 × g 离心2分钟,沉淀BSLB。弃去上清液,然后用100 µL T细胞悬液重悬BSLB。轻轻混匀以避免产生气泡。将共培养物在37 °C下孵育90分钟。
避光保护细胞,并先将共培养物在室温下孵育至少15分钟以降温。在室温下以500 × g 离心共培养物5分钟。弃去上清液,并在室温下用不含钙离子和镁离子的2% BSA-PBS重悬共培养物以进行封闭。将细胞置于冰上45分钟,并避光保护。
使用预冷的、经0.22微米滤膜过滤的含2% BSA的PBS作为染色缓冲液,配制抗体主混合液。该主混合液可提供额外的封闭效果。将共培养细胞在500 × g、4摄氏度条件下离心5分钟,弃去上清液,然后使用多通道移液器将细胞重悬于含有优化抗体浓度的主混合液中。
包括同型标记的细胞和BSLBs、荧光及非荧光BSLBs,以及单独染色的细胞和BSLBs。用移液器轻轻吹打,吸取一半体积,混匀。在冰上孵育30分钟,并避免光照。使用预冷的含2% BSA的PBS洗涤细胞和BSLBs两次,在4摄氏度下以500 × g 离心5分钟。离心后,检查沉积在孔板底部的共培养物。然后,将洗涤后的共培养物重悬于100微升PBS中,并立即上机检测。