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取一个微量滴定板,加入新型抗菌肽(AMPs)——即待测化合物——的系列稀释液。
将部分孔指定为生长对照孔,并加入不含抗菌肽(AMPs)的无菌水。
将悬浮于培养基中的致病真菌加入选定的孔中。
在指定为空白对照的孔中,仅加入不含真菌的培养基。
密封培养板,并在有利于真菌生长的湿润条件下孵育。
孵育结束后,在显微镜下观察各孔。
生长对照组因在无AMPs的情况下出现真菌生长而呈现浑浊。AMP的所有稀释度均出现浑浊,表明其对真菌无效。
不含真菌生长的空白对照孔呈透明状。将检测孔与空白对照孔进行比较,以确认无菌生长,表明抗菌肽(AMPs)具有抗真菌活性。
能够抑制真菌生长的抗菌肽(AMP)的最低浓度称为最小抑菌浓度(minimum inhibitory concentration,MIC)。
采用96孔聚苯乙烯微孔板进行抗真菌实验,每种肽段及对照抗真菌药物均进行2倍系列稀释,每孔终体积为50 µL,实验重复三次。
该实验方案中最关键的步骤是系列稀释。因此,在接下来的几个步骤中务必格外小心,避免任何可能影响整个分析结果的错误。
使用移液器,将抗真菌肽以所需最高终浓度的两倍浓度,向 A 行第 1 至第 3 列的孔中各加入 100 微升。使用多通道移液器,向 B 至 H 行的其余各孔中加入 50 微升无菌水。从具有最高浓度的孔中吸取 50 微升,转移至下一浓度对应的孔中,并通过反复吹打数次混匀。
重复梯度稀释,直至达到最低浓度的孔,并从这些孔中弃去 50 微升。在 A、B 和 C 行的第 11 和第 12 列中仅加入水,作为空白对照或阴性生长对照。向第 1 至第 3 列以及第 11 列的每个孔中加入 50 微升用 RPMI1640 培养基调整至双倍浓度的接种液。
C. albicans 的最终浓度为每毫升 2,000 个细胞,C. neoformans 的最终浓度为每毫升 10,000 个细胞。通过将 50 微升水与 50 微升不含抗真菌药物的调整后接种物混合,制备阴性生长对照。通过将 50 微升水与 50 微升不含细胞的培养基混合,制备空白对照。
将对照样品加入相应的孔中。使用倒置光学显微镜观察所有孔,并在37°C、200 RPM振荡条件下培养板子。孵育结束后,再次观察所有孔,以确认细胞形态的变化,并检查是否存在污染迹象。