0 次观看 • 2:46 分钟 • July 8th, 2025
取一个含有贴壁生长的间充质干细胞(MSC)培养物的多孔板。
加入外周血单个核细胞(PBMCs),并进行孵育。
MSCs 分泌肝细胞生长因子,诱导单核细胞获得免疫调节表型,产生白细胞介素-10(IL-10)。
将含有 PBMC 的上清液转移至离心管中。
加入针对单核细胞表面标志物 CD14 的抗体包被磁珠。
使用磁性分离器分离 CD14+ 单核细胞,并将其以逐渐增加的浓度加入多孔板的孔中。
引入荧光染料CFSE标记的效应CD4+ T细胞。
加入特异性结合T细胞表面标志物CD3和CD28的抗体偶联微珠,以激活细胞。
在缺乏单核细胞的对照孔中,活化的T细胞发生增殖,每次细胞分裂均使其子代细胞中的CFSE荧光强度降低。
然而,在共培养体系中,间充质干细胞诱导的单核细胞会分泌IL-10,从而抑制效应T细胞的增殖。
通过流式细胞术观察到,随着单核细胞浓度的增加,表现出降低的CFSE荧光强度的T细胞减少,表明MSC诱导的单核细胞抑制了效应T细胞的增殖。
进行效应细胞抑制实验时,首先建立MSC-PBMC共培养体系,将2.5 × 106个PBMC与250,000个MSC共培养,以确保有足够的MSC共培养PBMC用于亚群筛选。
在37摄氏度培养48至72小时后,使用适当的磁珠分选目标MSC诱导的免疫调节性白细胞。然后,在每孔1毫升完全白细胞培养基中,按不同的实验比例加入CFSE标记的同种异体CD4阳性T细胞。
接下来,按1:1的微珠-细胞比例加入与抗CD3/28偶联的微珠,以刺激CD4阳性T细胞。共培养第三天,通过流式细胞术评估CFSE标记的CD4阳性T细胞的增殖情况。
本研究探讨了间充质干细胞(MSCs)对外周血单个核细胞(PBMCs)的免疫调节作用。重点阐述了MSCs如何诱导单核细胞产生免疫抑制表型,从而导致T细胞增殖减少。
该检测通过量化单核细胞介导的T细胞增殖抑制作用,实现对基于间充质干细胞(MSC)的免疫调节疗法的机制性风险评估。该方法可定量读取白细胞介素-10(IL-10)依赖性免疫抑制活性,支持免疫治疗开发中的靶点验证与先导化合物筛选。通过将MSC诱导的单核细胞表型与功能性免疫调节相联系,该技术增强了临床前模型的预测可靠性。
该检测适用于从发现到临床前研究的连续流程,可在细胞治疗管线中实现靶点识别后、先导化合物优化前的免疫调节活性评估。
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最后更新:29 八月 2026