一种体外评估单核细胞对白细胞增殖免疫调节作用的实验方法

0 次观看2:46 分钟 • July 8th, 2025

取一个含有贴壁生长的间充质干细胞(MSC)培养物的多孔板。

加入外周血单个核细胞(PBMCs),并进行孵育。

MSCs 分泌肝细胞生长因子,诱导单核细胞获得免疫调节表型,产生白细胞介素-10(IL-10)。

将含有 PBMC 的上清液转移至离心管中。

加入针对单核细胞表面标志物 CD14 的抗体包被磁珠。

使用磁性分离器分离 CD14+ 单核细胞,并将其以逐渐增加的浓度加入多孔板的孔中。

引入荧光染料CFSE标记的效应CD4+ T细胞。

加入特异性结合T细胞表面标志物CD3和CD28的抗体偶联微珠,以激活细胞。

在缺乏单核细胞的对照孔中,活化的T细胞发生增殖,每次细胞分裂均使其子代细胞中的CFSE荧光强度降低。

然而,在共培养体系中,间充质干细胞诱导的单核细胞会分泌IL-10,从而抑制效应T细胞的增殖。

通过流式细胞术观察到,随着单核细胞浓度的增加,表现出降低的CFSE荧光强度的T细胞减少,表明MSC诱导的单核细胞抑制了效应T细胞的增殖。

进行效应细胞抑制实验时,首先建立MSC-PBMC共培养体系,将2.5 × 106个PBMC与250,000个MSC共培养,以确保有足够的MSC共培养PBMC用于亚群筛选。

在37摄氏度培养48至72小时后,使用适当的磁珠分选目标MSC诱导的免疫调节性白细胞。然后,在每孔1毫升完全白细胞培养基中,按不同的实验比例加入CFSE标记的同种异体CD4阳性T细胞。

接下来,按1:1的微珠-细胞比例加入与抗CD3/28偶联的微珠,以刺激CD4阳性T细胞。共培养第三天,通过流式细胞术评估CFSE标记的CD4阳性T细胞的增殖情况。

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最后更新:29 八月 2026