0 次观看 • 3:45 分钟 • December 22nd, 2025
从含有贴壁的鼠源巨噬细胞——即吞噬性免疫细胞——的多孔板开始。
加入真菌细胞悬液 隐球菌与巨噬细胞受体相互作用并内化 通过 吞噬作用
吞噬体与溶酶体融合,形成吞噬溶酶体。吞噬溶酶体的酸性环境有利于真菌的存活和增殖。
在测试孔中加入高浓度的伯氨喹——一种光敏剂,而对照孔中不加光敏剂。孵育以促进巨噬细胞对伯氨喹的摄取。
将培养板暴露于紫外光下进行光动力治疗(PDT)。
在检测孔中,伯氨喹形成自由基阳离子,与分子氧相互作用,产生活性氧物质(ROS)。
活性氧可诱导真菌死亡,而巨噬细胞中的抗氧化酶可中和活性氧,防止细胞损伤。
透化巨噬细胞,释放真菌细胞。
将稀释后的细胞样品涂布于选择性琼脂平板上,以获得明显分离的真菌菌落。
与对照组相比,实验组平板上的菌落数量较少,表明由于采用伯氨喹进行光动力治疗,巨噬细胞的吞噬效率得到增强。
按照文本方案所述,取小鼠巨噬细胞系在完全RPMI 1640培养基中的悬浮液。将100微升该细胞悬液加入无菌96孔平底培养板的各孔中。将培养板在培养箱中过夜孵育。
第二天,从培养箱中取出培养板。用100微升新鲜RPMI-1640培养基替换用过的旧培养基。然后,向接种了巨噬细胞的培养板中加入100微升隐球菌细胞悬液。
为了研究光动力效应,配制所需浓度的光敏剂工作液。向预先接种了巨噬细胞和隐球菌细胞的培养板中加入 100 微升工作液。
将培养板置于避光条件下孵育,使细胞与药物发生反应。孵育结束后,将培养板暴露于紫外光下照射两分钟。
启动光动力治疗后,将培养板孵育18小时。孵育结束后,移除上清液,并用200 µL磷酸盐缓冲液洗涤细胞。
向孔中加入 300 微升 0.1% Triton X-100,室温孵育 10 分钟。
吸弃每孔中的内容物,并将其分别加入到单独的无菌1.5毫升塑料离心管中。用蒸馏水将细胞稀释10倍,然后用移液器吸取50微升稀释液,分别接种至各自的酵母麦芽提取物琼脂平板上。
采用涂布平板法在琼脂平板表面形成致密的细胞菌苔。将平板培养 48 小时。计数琼脂平板上的菌落形成单位。
本研究探讨了小鼠巨噬细胞与隐球菌细胞之间的相互作用,重点研究利用伯氨喹进行光动力治疗的效果。研究方法包括吞噬作用、活性氧物质的形成以及后续的真菌细胞死亡。
该方法能够对巨噬细胞介导的病原体清除进行定量评估,有助于免疫调节药物研发中的靶点验证。通过将光敏剂增强的吞噬作用与可测量的真菌负荷减少相关联,为宿主导向抗真菌策略的风险评估提供了一种机制性读出手段。该检测体系适用于调控先天免疫效应功能化合物的早期筛选。
该检测适用于从靶点验证到先导化合物鉴定的整个发现流程,可在临床前药效研究之前,提供一个与疾病相关的系统来评估免疫调节机制。
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最后更新:22 八月 2026