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首先制备含有重组髓鞘蛋白与佐剂的乳剂。
将该混合物注射到已麻醉大鼠的尾部皮下层,该大鼠脑内已预先置入导管。
佐剂可增强皮下层和淋巴结中抗原的免疫应答,从而产生进入循环系统的效应T细胞。
利用预先植入的导管,将促炎性细胞因子直接注入脑内。
这些细胞因子在大脑皮层中扩散,并破坏血管内皮细胞间的连接。
这允许多种免疫细胞进入大脑皮层。
单核细胞分化为巨噬细胞,释放活性氧,导致产生髓鞘的少突胶质细胞死亡。
B细胞与效应T细胞相互作用,促使B细胞分化为分泌抗髓鞘蛋白抗体的细胞。
这些抗体与髓鞘蛋白相互作用,损伤神经元周围的髓鞘。
这会导致大鼠模型中广泛的大脑皮层脱髓鞘。
制备免疫混合物时,将两个10毫升鲁尔锁扣玻璃注射器连接至三通旋塞的短臂端,并用长臂端封闭第三个出口。随后,用移液器将1毫升IFA和50微克rMOG一同吸入,再用无菌PBS调节混合物体积至终体积2毫升。
将稀释后的 IFA 与 rMOG 混合物置于敞口注射器中,轻轻插入活塞,同时对另一端活塞保持轻微压力。通过将接种物在两个注射器之间来回推动进行乳化。 通过 来回推动活塞,直至呈白色且黏稠状。
接下来,将一个1毫升的鲁尔锁式注射器连接到三通旋塞阀的开放短臂上,并吸入接种物。将全部接种物分装至1毫升注射器中,并在注射前置于冰上保存。随后,在短暂的异氟烷麻醉下,使用21号针头将200微升IFA与rMOG混合物在尾根部进行皮下注射。
进行脑内细胞因子注射时,将连接套管的长度调整为2毫米。用细胞因子混合物填充1毫升注射器,然后将注射器连接到连接套管上。
接下来,用细胞因子混合物填充套管,避免产生任何气泡。然后,将注射器安装到可编程注射泵上,并设置注射速率为每分钟 0.2 µL。启动泵并持续运行,以防止套管尖端形成气泡。
随后,取下带有入口的导管帽。将连接器套管插入导管,旋紧并固定。然后,让注射持续进行10分钟,再停止泵送。
将套管保留在导管内20分钟,以使注入的液体充分扩散。随后,拧开连接套管并缓慢取出,避免产生真空效应。重新安装带入口的导管帽并拧紧。将动物置于笼中,使其从麻醉状态恢复。