0 次观看 • 3:16 分钟 • July 8th, 2025
从含有树突状细胞(DC)悬液的多孔板开始。
为了模拟高血压条件,加入含有高浓度钠离子的培养基并进行孵育。
孵育过程中,钠离子进入细胞,导致细胞内钠离子浓度升高。
这会触发细胞内钠离子与细胞外钙离子的交换。
细胞内钙水平升高会激活促进活性醛类生成的通路,这些活性醛类可与细胞蛋白结合。这会激活树突状细胞(DCs),使其将这些被修饰的蛋白呈现在细胞表面。
孵育结束后,将细胞收集至离心管中并离心。
移除上清液。加入新鲜缓冲液重悬细胞。
将细胞悬液吸入注射器中。
取一只麻醉小鼠,将细胞悬液注射至眼球后区域,即眼窝后方的部位。
这种注射活化免疫细胞的过程被称为过继性细胞转移。
用移液器将900微升DC悬浮液加入24孔平底Falcon板中。每孔加入100微升高盐DC培养基,使终钠浓度为190毫摩尔/升。标记培养板,并将其置于37摄氏度、加湿的二氧化碳培养箱中孵育48小时。
48 小时后,从培养箱中取出培养板。在单个孔中上下吹打细胞培养基,以重悬 CD11c 阳性树突状细胞。将全部悬液转移至相应标记的 1.6 毫升离心管中。对每个接种的孔重复此操作。
将所有离心管在300 × g、4摄氏度条件下离心10分钟。吸除上清液,并用100微升无菌DPBS重悬树突状细胞沉淀。接着,从其中一根离心管中吸取树突状细胞悬液,注入一支配有27号半英寸针头的1毫升注射器中。
将10周龄未经处理的雄性C57黑六小鼠置于2%异氟烷中,以达到稳定的手术麻醉水平。通过检查足底反射消失来确认麻醉深度。一旦达到稳定的麻醉状态,以约30度的角度缓慢而谨慎地将针头插入眼后腔。
缓慢而平稳地注射CD11c阳性树突状细胞悬液。注射完成后,小心地从眶后腔拔出针头,注意避免损伤眼睛。随后将小鼠从鼻罩中取出,并在麻醉恢复期间密切观察约30分钟。
本文介绍了一种在高血压条件下激活树突状细胞(DCs)并将其用于过继性细胞转移的方法。该过程通过调控钠离子和钙离子浓度来激活树突状细胞,随后将这些细胞注射至小鼠体内。
该方法能够在高血压应激条件下对树突状细胞的活化机制进行深入研究,提供一个可控系统以探讨离子介导的免疫调节作用。通过异左旋前列腺素-蛋白质加合物的形成生成明确的新抗原,支持在自身免疫性和炎症性疾病模型中进行靶点验证。过继性转移工作流程为基于树突状细胞的免疫调节策略的临床前评估提供了可重复的方法。
该方法通过提供一种工具,在投入成本较高的治疗候选物之前验证以树突状细胞为中心的机制,从而契合从发现到临床前研究的连续过程。
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最后更新:22 八月 2026