一种高盐处理树突状细胞及其过继性转移至小鼠的方法

0 次观看3:16 分钟 • July 8th, 2025

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从含有树突状细胞(DC)悬液的多孔板开始。

为了模拟高血压条件,加入含有高浓度钠离子的培养基并进行孵育。

孵育过程中,钠离子进入细胞,导致细胞内钠离子浓度升高。

这会触发细胞内钠离子与细胞外钙离子的交换。

细胞内钙水平升高会激活促进活性醛类生成的通路,这些活性醛类可与细胞蛋白结合。这会激活树突状细胞(DCs),使其将这些被修饰的蛋白呈现在细胞表面。

孵育结束后,将细胞收集至离心管中并离心。

移除上清液。加入新鲜缓冲液重悬细胞。

将细胞悬液吸入注射器中。

取一只麻醉小鼠,将细胞悬液注射至眼球后区域,即眼窝后方的部位。

这种注射活化免疫细胞的过程被称为过继性细胞转移。

用移液器将900微升DC悬浮液加入24孔平底Falcon板中。每孔加入100微升高盐DC培养基,使终钠浓度为190毫摩尔/升。标记培养板,并将其置于37摄氏度、加湿的二氧化碳培养箱中孵育48小时。

48 小时后,从培养箱中取出培养板。在单个孔中上下吹打细胞培养基,以重悬 CD11c 阳性树突状细胞。将全部悬液转移至相应标记的 1.6 毫升离心管中。对每个接种的孔重复此操作。

将所有离心管在300 × g、4摄氏度条件下离心10分钟。吸除上清液,并用100微升无菌DPBS重悬树突状细胞沉淀。接着,从其中一根离心管中吸取树突状细胞悬液,注入一支配有27号半英寸针头的1毫升注射器中。

将10周龄未经处理的雄性C57黑六小鼠置于2%异氟烷中,以达到稳定的手术麻醉水平。通过检查足底反射消失来确认麻醉深度。一旦达到稳定的麻醉状态,以约30度的角度缓慢而谨慎地将针头插入眼后腔。

缓慢而平稳地注射CD11c阳性树突状细胞悬液。注射完成后,小心地从眶后腔拔出针头,注意避免损伤眼睛。随后将小鼠从鼻罩中取出,并在麻醉恢复期间密切观察约30分钟。

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最后更新:22 八月 2026