0 次观看 • 3:10 分钟 • July 8th, 2025
将小鼠视网膜置于湿润的细胞筛网上,以环形运动研磨,以分离视网膜细胞与细胞外基质。
将滤网转移至收集管中。
向滤网中加入磷酸盐缓冲液和血清溶液,以洗涤并收集细胞。
离心以沉淀细胞。弃去上清液,并将细胞重悬于磷酸盐缓冲液和血清溶液中。
加入可结合细胞表面 Fc 受体的封闭抗体,以防止目的抗体的非特异性结合。
接下来,加入针对不同细胞类型表面特定标记物的荧光标记和未标记的一抗。
洗涤以去除未结合的抗体。
加入荧光标记的二抗,以结合未标记的一抗。
洗涤以去除未结合的抗体。
通过荧光激活细胞分选(FACS)捕获标记细胞的特异性荧光信号,并从多种视网膜细胞群体中分选出视网膜神经节细胞。
将最多12个视网膜置于已用PBS和FBS润湿的无菌70微米尼龙筛网上,使用10毫升注射器活塞的尾端以环形运动轻轻研磨视网膜组织。当所有细胞均已解离后,将筛网置于聚丙烯收集管上方,用P1000移液器将细胞悬液经筛网过滤至收集管中。
用 PBS 和 FBS 冲洗滤网,将洗涤液收集至收集管中。加入足够的 PBS 加 FBS,使最终溶液体积达到每视网膜 1 毫升,然后通过离心收集细胞。接着,将沉淀重悬于 PBS 加 FBS 中,每 5 个视网膜使用 1 毫升培养基的浓度。接下来,在每管中加入抗小鼠 CD16/32 抗体,每 1 × 106 个细胞加入 1 微升,室温孵育 10 分钟,以阻断任何非特异性 FC 受体结合。
封闭孵育结束后,轻轻吹打加入适量的抗体混合液,冰上避光孵育30分钟。随后,用终体积为4毫升的PBS和FBS溶液洗涤细胞两次。加入合适的二抗,冰上避光标记30分钟,再用含FBS的PBS洗涤两次,将样品管上机进行流式细胞术检测。
本文详细介绍了一种利用荧光激活细胞分选(FACS)从鼠类视网膜中分离视网膜神经节细胞的实验方案。该方法包括视网膜细胞的解离、阻断非特异性结合以及使用抗体对细胞进行标记以实现分选。
分离原代视网膜神经节细胞可通过提供一个经过纯化且与疾病相关的功能检测体系,实现神经退行性疾病靶点验证中的机制性风险降低。该方法通过允许直接探究视网膜神经节细胞特异性通路及治疗假设,增强了早期发现阶段的预测可信度。该技术可提升视觉神经科学研究中从靶点识别到临床前模型构建的转化连续性。
该方法适用于从靶点验证到检测方法开发再到临床前评估的整个发现流程,能够基于视网膜神经节细胞特异性读数对治疗候选物进行迭代优化。
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最后更新:22 八月 2026