0 次观看 • 3:06 分钟 • July 8th, 2025
将固定好的转染小鼠冠状脑片置于记录室中,并用 aCSF 灌流。
该切片含有少量表达目标酶和荧光蛋白的锥体神经元。
组装一个记录电极,该电极包含内液溶液和连接至放大器的电极,用于测量神经元信号。
在显微镜下识别目标组织区域并定位荧光神经元。
向移液管施加正压以防止堵塞,并将其推进至目标神经元。
正压会在接触时导致神经元膜产生轻微凹陷。
释放压力,使膜与尖端之间形成紧密的密封。
将钳制电位设定在恒定的负值,以稳定神经元。
施加短暂的负压以破裂细胞膜,使细胞质与移液管内部连通,形成全细胞记录构型。
切换到电流钳模式,并施加正向电流脉冲,以产生表征神经元兴奋性的动作电位。
使用巴斯德移液管或小毛刷将脑片转移至记录室。用网格固定器压住脑片,并以每分钟2毫升的速度灌注人工脑脊液(ACSF)。为对GFP阳性神经元进行膜片钳记录,先在10倍物镜下通过显微镜定位目标区域,然后切换至60倍物镜寻找GFP阳性细胞。
接下来,用细胞内液填充记录电极。随后,将玻璃移液管放入移液管固定器中。然后,将移液管尖端置于浴液中,并对准尖端进行聚焦。一旦移液管进入浴液,即通过后端压力控制系统施加正压。
在显微视觉引导下接近目标细胞,同时保持移液管内的回压。当细胞表面出现微小凹陷时,释放压力。此时可能形成电阻大于1 GΩ的紧密封接;若未形成,可施加轻微负压以促进封接。
在形成封接的同时,将电压钳制电位调至负60毫伏。一旦形成吉欧姆封接,施加短暂的吸力脉冲以破裂细胞膜,进入全细胞记录模式。进入全细胞模式后,从电压钳模式切换至电流钳模式并开始记录。
本文介绍了一种在固定的小鼠冠状脑片中对荧光标记的神经元进行膜片钳记录的方法。该技术可通过动作电位来测量神经元的兴奋性。
利用全细胞膜片钳技术对荧光标记的神经元进行神经元兴奋性的定量评估,能够精确研究特定细胞群体的功能特性。该方法有助于在神经科学早期药物发现中进行机制性降风险和靶点验证。在基因明确识别的神经元中可靠地记录动作电位,可为关键项目决策节点提供具有预测价值的信心依据。
该方法可融入从早期靶点验证到检测方法开发及临床前研究的整个发现过程,支持机制性研究和转化研究的连续性。
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最后更新:22 八月 2026