0 次观看 • 3:05 分钟 • July 8th, 2025
将固定好的转染小鼠脑切片置于充满含氧人工脑脊液的电生理记录室中。
该脑片含有表达光敏感离子通道与荧光蛋白融合蛋白的丘脑神经元轴突末梢。
观察荧光标记的丘脑神经元轴突,并选择一个锥体神经元。
将含有电极并充满细胞内液的记录电极管在轻微正压下向所选神经元推进。
正压在接触时会在神经元膜上形成一个凹陷。
释放压力以形成高阻封接。
将膜电位设定为一个恒定的负值。
施加负压脉冲以破裂膜,实现全细胞构型。
照亮轴突末梢,激活光敏感通道,使神经元膜去极化,从而触发动作电位。
兴奋性神经递质被释放,与记录神经元上的受体结合,引起阳离子内流。
记录由此产生的兴奋性突触后电流,表明神经元之间存在直接的突触连接。
进行全细胞膜片钳记录时,将含有海马复合体的脑片轻柔转移至记录室中。以持续通入碳合气的34摄氏度人工脑脊液(ACSF),以每分钟2至3毫升的流速不断灌注记录室。在4倍放大倍率下,使用蓝色LED照明,快速观察目标区域轴突末梢中chronos GFP的表达情况。
切换至63倍油镜物镜并调节焦距。检查表达Chronos GFP的轴突,选择一个锥体神经元进行膜片钳记录。接着,用基于葡萄糖酸钾的内液填充玻璃微电极,并将其安装至显微操作器的电极夹持器上。以电压钳模式对细胞进行膜片钳记录。
接近已识别的神经元,并轻柔地将移液管尖端压在细胞体上。正压应在膜表面形成一个小凹陷。随后,释放压力以形成吉欧姆密封。密封完成后,将钳制电压设为负65毫伏。
通过施加短暂的负压脉冲破坏膜结构。记录在475纳米LED全视野刺激表达chronos的传入纤维时,电流钳或电压钳下的突触后反应。以20赫兹频率、持续2毫秒的刺激组成10次脉冲的刺激串进行刺激。
本文详细介绍了一种从小鼠脑切片中的锥体神经元进行全细胞膜片钳记录的方法。该技术涉及使用光敏感离子通道来可视化并刺激神经元活动。
该方法能够对与疾病相关的神经环路中的突触连接进行精确解析,通过功能性验证神经通路来支持靶点的确证。通过结合光遗传学刺激与电生理记录,该方法可提供关于环路机制的定量且具有因果关系的证据,从而提高临床前靶点筛选的预测可信度。该策略通过在化合物筛选前建立直接的突触连接,降低了靶点假设的风险。
该方法适用于早期发现阶段的工作流程,在先导化合物筛选之前进行电路水平的靶点验证,可在化合物筛选实验之前提供机制层面的深入见解。
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最后更新:22 八月 2026