记录大鼠响应动脉压的肾交感神经活动的变化

0 次观看5:15 分钟 • July 8th, 2025

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取一只仰卧位的麻醉大鼠,在腹股沟区域做一个切口,露出股动脉。

塞动脉以暂时限制血流。创建一个开口,插入压力感应导管以测量动脉血压,并固定导管。

大鼠置于立体定位框架中的俯卧位,并在肋骨下方做一个侧切口。

使用显微镜识别调节肾脏血流的肾交感神经或 RSN。

神经提升到记录电极上,添加油以防止神经脱水并记录电活动。

静脉注射导致动脉狭窄的药物,从而升高全身血压。

压力感受器检测血压升高并向脑干发出信号以抑制交感神经,包括 RSN。

去除油,涂上凝胶固定电极以稳定记录,并监测 RSN 活性。

RSN 活性的短暂抑制与动脉压升高同时发生,证实了药物诱导的 RSN 抑制。

动脉插管前,在高放大倍率下检查压力传感导管,确认导管没有气泡和碎屑,并且在液体和凝胶填充成分之间有完整的半月面。每次植入前,在导管远端重新填充凝胶,并使用磁铁打开发射器。在近端缝合线中放置一个松散的正手半结,短暂闭塞股动脉,用非惯用手握住导管导引器,用血管插管镊子抓住遥测单元的插管尖端,避免凝胶从尖端移位。

使用弯曲的 22 号针尖在动脉上刺穿一个孔,然后将插管尽可能插入动脉。然后,用近端和远端缝合带固定压力导管,并将遥测植入物的主体塞入靠近切口的侧腹内。轻轻地将大鼠移至立体定向手术架中的俯卧位,头部位于耳杆之间。

为了隔离肾交感神经,将一根电线肾交感神经活动或 RSNA 电极连接到微电极放大器中的 10X 前置放大器,并在肋骨下方 4 至 5 厘米处做一个手术刀切口,沿尾部方向延伸,略微外侧脊柱。

钝性解剖

以观察椎旁肌肉,并在脂肪与肌肉相交的地方做一个非常浅的 1 到 2 厘米的喙尾切口。使用棉头涂抹器,将脂肪从肌肉上扩散开,在不进入腹膜腔的情况下可视化肾脏,并使用牵开器轻轻地将肾脏与椎旁肌分开,以可视化肾动脉和腹主动脉,并使用高倍率识别切口袋中的肾神经。

神经束在主动脉和肾动脉形成的直角处最容易看到,紧跟肾动脉从主动脉到肾脏。然后,使用显微解剖镊子从周围组织轻轻解剖要放置在记录电极上的神经束的一部分。将电线 RSNA 电极固定在支架中,并将电极降低到神经段的水平。

使用神经钩轻轻地将肾神经段抬起到电极上,不要拉伸神经,并用矿物油填充切口,以保持暴露的肾交感神经水分。将接地夹连接到动物,另一端连接到法拉第笼,并使用高通和低通滤波将信号引导至放大器。然后,将增益调整到 10 kHz(包括音频监视器),以评估 RSNA 的突发模式。

为了评估 RSNA 记录的质量,通过每毫升去氧肾上腺素 100 微升推注静脉注射 10 微克来唤起压力反射,以增加血压并抑制肾交感神经活动,根据需要调整电极的位置以改善信号。获得清晰信号后,吸出矿物油,并用硅胶将电极固定到位。

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最后更新:1 八月 2026