0 次观看 • 4:49 分钟 • July 8th, 2025
以一只头部固定在头部固定适配器中的麻醉转基因小鼠开始实验。
小鼠大脑表达一种荧光蛋白,可实现神经活动的检测。
在切开头皮前,先剃除毛发并依次对头皮进行消毒。
去除结缔组织以暴露颅骨。
标记目标区域并涂上一层胶水。
使用微型钻头在标记区域磨薄颅骨。
移除颅骨碎片以暴露大脑。
加入人工脑脊液以保持脑组织湿润。
在该区域安装一个光学窗口,并用胶水密封,以提供用于粘合剂固定的基底。
使用黑色牙科水泥阻挡光线。
在颅骨的另一侧重复该操作。
让动物恢复。
为了成像神经活动,将固定好的麻醉小鼠置于显微镜下并采集图像。
确认麻醉后的 Thy1-GCaMP6s 小鼠(体重 20 至 25 克,年龄 1.5 至 2.5 个月)对脚趾夹捏无反应,并在动物眼睛上涂抹眼膏。将小鼠置于覆盖无菌铺巾的加热垫上,使用小鼠头部固定装置稳定头部。用双刃剃刀剃除大部分头皮毛发,随后依次使用无菌酒精棉片和聚维酮碘溶液擦洗暴露的皮肤。然后,使用剪刀在头皮上制作一个 2 毫米 × 3 毫米的矩形切口。
使用棉签将皮肤推开,形成直径大于3毫米的暴露区域,然后用钝头显微外科刀片轻轻去除附着在颅骨上的结缔组织。使用牙科钻在S1区域周围轻轻标记一个直径为3毫米的圆圈。在颅骨左侧同样制作一个圆圈后,在骨面两侧涂上一层薄薄的氰基丙烯酸酯超级胶水,以为后续涂抹牙科水泥提供基础。
在解剖显微镜下,使用高速微型钻头在颅骨右侧S1区域周围磨出一个环形凹槽,使其边缘光滑,必要时用真空装置吸除骨屑。当钻至约三分之二颅骨厚度后,缓慢而小心地继续磨薄剩余的三分之一骨质,直至形成一个完全游离的环形骨瓣。使用一对#5/45镊子缓慢而谨慎地移除该环形骨片,以暴露硬脑膜,注意避免损伤软脑膜血管。
以相同方式去除颅骨左侧的骨瓣后,用无菌生理盐水冲洗颅骨右侧的光学窗口,并在体视显微镜下检查是否存在缺陷。将光学窗口安装至颅骨开窗区域,使窗口的上部置于颅骨表面,下部位于颅骨开窗孔内,接触充满脑脊液的硬脑膜。使用氰基丙烯酸酯超级胶水将光学窗口边缘的上部与颅骨密封固定。
胶水干燥后,在玻璃边缘、暴露颅骨右侧的其余部分以及伤口边缘涂抹黑色牙科水泥,以阻隔光线。然后安装左侧光学窗口,并在密切监测下让动物恢复至完全清醒卧位。手术后7至10天,将麻醉后的动物置于加热垫上的头部固定适配器中,并置于双光子显微镜下,注意确保光学窗口和颅骨右侧与显微镜的光轴垂直。
使用4倍放大倍率的明场照明获取颅窗的初始参考图。在获取同一感兴趣区域的多张图像后,对左侧半球S1区域内的钙动力学进行成像,并计算颅骨两侧每个感兴趣区域的荧光变化。
本文介绍了一种使用双光子显微镜对基因改造小鼠的神经活动进行成像的详细方案。该操作流程包括制作颅窗,以实现对大脑活动的直接观察,同时确保动物的安全与舒适。
在转基因模型中建立可靠的神经活动成像技术,有助于中枢神经系统药物研发中的靶点验证和作用机制去风险化。颅窗技术能够实现对神经元动态的长期、定量监测,从而提高早期治疗假设的预测可信度。该方法通过在与疾病相关的系统中提供靶点结合和通路调控的直接且可转化的读数,降低了生物学上的不确定性。
该方法通过其可重复、定量的神经活动测量能力,贯穿从早期靶点验证、先导化合物发现到临床前药效测试的整个发现流程。
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最后更新:29 八月 2026