长时间孵育后测量小鼠脑切片中的神经活动

0 次观看2:55 分钟 • July 8th, 2025

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小鼠脑切片固定在记录室中,在长时间孵育后灌注含氧aCSF。

切片中的细胞装有钙指示剂,便于细胞内钙测量。

取一个记录移液器,该移液器包含电极在电解质溶液中。

识别目标神经元。将记录移液器以正压放置在细胞膜上,形成凹坑。

施加负压以形成紧密密封。

此外,施加负压脉冲,破裂膜并建立全细胞配置。

注高钾浓度的aCSF,使神经元膜去极化。

去极化打开钠通道,触发动作电位,进而激活电压门控钙通道并允许钙流入。

钙离子与指示剂结合,增强荧光,在适当的照明下可以观察到荧光。

钾应用后钙流入引起的细胞内荧光增加表明长时间孵育后的神经元活力。

对于记录,将组织置于显微镜下的浸没记录室中,并以每分钟4至5毫升的流速用含氧aCSF灌注。使用定制的竖琴将纸巾固定在里面。接下来,使用微量移液器拉拔器准备一些记录移液器,以达到 5 至 6 兆欧姆的最终阻力。

3 至 4 微升内部溶液填充移液器,然后将溶液放在冰上。然后,在IR-DIC下使用CCD相机可视化细胞。使用显微纵器将移液器放置在细胞膜上。通过移液器支架上的吸入口保持正压。移液器进入细胞后,对移液器施加温和的负压以实现千兆欧姆密封。

然后,用短暂的负压破裂细胞膜。随后,开始全电池电流或电压钳位记录。对于流量 4 的单个激发波长,通过 460 至 490 纳米带通滤光片过滤激发光,并通过 515 至 550 纳米带通滤光片过滤发射光。

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最后更新:1 八月 2026