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从一个包含固定转基因果蝇并暴露其脑组织的电生理实验装置开始。
将记录微电极置于一个突触后神经元附近,该突触后神经元与一个共表达河豚毒素抗性钠通道和红光敏感通道的突触前神经元相连,同时与一个具有河豚毒素敏感钠通道的中间神经元相连。
对微移液管施加轻微负压,以与神经元膜形成紧密封接。
然后,施加强负压以破坏膜结构。
保持细胞电位恒定。加入河豚毒素,该毒素可阻断中间神经元中的钠离子通道,从而阻止信号从中间神经元传递至突触后神经元。
然而,河豚毒素抗性的钠通道仍不受影响,允许钠离子进入突触前神经元。
用红光脉冲照射果蝇。
这会刺激光敏感通道,使阳离子内流并激活突触前神经元。
该突触前神经元直接将信号传递给突触后神经元,不涉及中间神经元,所产生的电活动证实了单突触连接的存在。
在实验装置上,立即开始用含碳氧混合气(carbogen)饱和的记录液灌流组织标本。使用置于显微镜载物台上方的重力供液式生理盐水储液罐。用一个连接真空泵的两升废液瓶收集废液。
接下来,用四微升胞内记录液填充膜片钳电极,并将电极连接至显微操作器。然后,将放大器的偏移量调零,并设置放大器以输出测试脉冲。随后,调节红外斜射照明,以获得清晰的脑组织视野。
现在,在向移液管施加正压的同时,用移液管接近细胞。当移液管与细胞接触后,释放正压,使移液管与细胞膜形成封接。随后,将膜的保持电位设定为 -60 毫伏,此时移液管应与细胞膜形成吉欧姆(gigaohm)封接。保持电流应下降至低于皮安水平的极低值。
为了获得稳定的千兆欧姆封接,请通过保持正压来确保移液管清洁,并在接近细胞时避免触碰组织。
继续操作时,将放大器设置为输出从 -50 到 -60 毫伏的测试脉冲。这些测试脉冲将显示出一个较大的电容性瞬变,代表为充电膜片电极所需电流。为消除电容性瞬变,需调节放大器上的电容补偿旋钮。
现在施加短暂的负压脉冲以破裂细胞膜,获得全细胞记录模式。电容性瞬变电流的显著增加表明操作成功,同时应观察到保持电流的轻微上升。随后,将放大器设置为电流钳模式,并调节细胞膜电位至 -50 至 -60 毫伏之间。
可根据需要调整钳制电位,以突出兴奋性或抑制性连接。一旦确认存在连接,即设置生理盐水灌流系统,使生理盐水循环使用。调节泵速,使浴槽中的生理盐水液面保持稳定。
然后,向系统中加入足量的河豚毒素,使其终浓度达到一微摩尔。这应能抑制被记录神经元的放电活动。如果未能抑制,可向系统中继续添加河豚毒素。现在,施加短暂的红光脉冲,以激活可能存在的单突触连接。