光遗传学刺激与大鼠脑片突触事件的电生理记录

0 次观看3:18 分钟 • July 8th, 2025

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从一个大鼠脑切片开始,该切片包含目标神经元区域,并与来自另一脑区的光敏轴突相连接。

将切片放入浸没式记录室中,并用切片固定器固定。

在显微镜下定位目标层并识别目标锥体神经元。

升高显微镜物镜,使切片表面形成弯月面。

将装有细胞内记录液的玻璃微电极插入此弯月面中。

用移液管尖端触碰已识别的锥体细胞,使细胞膜产生凹陷。

施加负压以形成封接。

逐渐增加负压,直至膜破裂,形成全细胞记录模式。

使用安装好的光源,向切片施加光脉冲。

这些光脉冲在光敏感的轴突中引发动作电位,从而在突触间隙释放神经递质。

记录锥体神经元对这些释放的反应,以分析突触效率。

为了识别靶细胞,将脑片放入记录室中,并使用脑片固定器将其固定。在低倍镜下,利用红外照明找到外侧内嗅皮层第5层。然后切换至高倍水浸物镜,识别锥体神经元。

用胶带在显示器上标记细胞的位置。接下来,为形成全细胞膜片钳,制备一根硼硅酸盐玻璃微电极,并用细胞内记录液将其填充。将装有溶液的微电极放入电极夹持器中,并通过对连接至电极夹持器侧端口的吹管用力吹气,施加正压。

升高显微镜物镜,使弯月面形成,然后将电极插入弯月面,直至在显微镜下可见。打开封接测试窗口,确认移液管电阻是否在3至5兆欧之间。随后,用移液管尖端接触已识别的细胞,使细胞膜产生压痕。

接下来,通过在吹嘴处施加负压吸引,增加移液管的阻抗。持续逐渐施加负压,直至细胞膜破裂,产生全细胞电容瞬变。要进入电流钳模式,使用安装好的LED,将其光线通过滤光镜组和适当的光学元件导入显微镜光路,并对脑片施加光脉冲。 通过 40倍物镜。以5赫兹、10赫兹和20赫兹的频率递送多脉冲光刺激序列,以研究突触前释放特性。

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最后更新:15 八月 2026