$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
取一个含有大鼠海马神经元的微流控芯片。
该芯片具有胞体和轴突储液区,通过微沟槽分隔成不同区域,可有效实现神经元的分区,并分离胞体与轴突区域。
移去培养基,加入甲醛。孵育以固定神经元并保持其结构。
去除多余的甲醛,并用缓冲液洗涤。然后加入去垢剂以透化神经元。
用封闭液替代洗涤剂,以封闭非特异性结合位点。
移除封闭液,加入可结合特定神经元突触标志物的一抗进行孵育,这些标志物是突触小泡上的整合膜蛋白。
去除未结合的抗体,并用缓冲液洗涤。
使用与靶向突触标志物的一抗结合的荧光标记二抗进行孵育。
去除未结合的二抗,并用缓冲液洗涤。
在共聚焦显微镜下对芯片进行成像,以观察荧光标记的神经元突触标志物。
开始荧光免疫染色时,从芯片中移除大部分培养基,同时保持内部隔室湿润。立即向轴突和胞体隔室的上层孔中各加入 100 微升固定液。
一分钟后,向底部小孔中加入 100 微升固定液,在室温下固定细胞 30 分钟。吸去小孔中的大部分溶液,立即向轴突和胞体区室的上部小孔中各加入 150 微升 PBS。等待两分钟使 PBS 流入底部小孔,然后吸去 PBS,并用相同方法再清洗两遍。
最后一次清洗后,移除芯片各孔中大部分 PBS,立即向轴突室和胞体室的上孔中各加入 150 微升含 0.25% Triton X-100 的 PBS。
等待15分钟,然后吸出孔中大部分液体。立即向轴突和胞体区室的每个上孔中加入150微升封闭液。15分钟后,吸出孔中大部分液体,并立即向轴突和胞体区室的每个上孔中加入100微升一抗溶液。
覆盖芯片以尽量减少蒸发,并在室温下将细胞与一抗共同孵育一小时。接着,通过移除大部分溶液来清洗芯片,并立即向轴突室和胞体室的每个上层孔中加入 150 µL PBS。五分钟后,吸去两个孔中的 PBS,并重复此清洗步骤两次。
现在,吸出各孔中的大部分液体,并立即向轴突和胞体区室的上部各孔中加入 100 µL 用 PBS 配制的二抗。盖好芯片以减少蒸发,在室温下孵育 1 小时。如前所述,用 PBS 洗涤芯片 3 次。然后按照随附的文字版实验方案所述进行芯片的封片和成像。