0 次观看 • 3:59 分钟 • July 8th, 2025
取含有神经细胞的固定小鼠脑切片,包括用EdU(一种胸苷类似物)标记的增殖神经干细胞。
使用疏水性标记勾勒出区域,以防止溶液扩散。
加入去垢剂以透化组织。洗涤以去除多余的去垢剂。
加入荧光染料以标记 EdU。去除过量的荧光染料。
使用荧光显微镜确认 EdU 标记细胞的染色情况是否正确。
加入含蛋白质的封闭缓冲液,以防止抗体非特异性结合。去除多余的蛋白质。
加入可结合神经干细胞中特定蛋白质的一抗进行孵育,然后去除未结合的一抗。
加入荧光素标记的二抗以结合一抗。洗去未结合的抗体。
用染料对细胞核进行染色,并洗去多余的染料。
去除疏水标记,滴加封片剂,并加盖盖玻片。
使用共聚焦显微镜观察切片,以可视化标记的神经干细胞。
为了用胸苷类似物对组织切片进行染色,将组织切片从柠檬酸盐缓冲液中取出。让组织切片干燥并完全贴附于载玻片上,然后用疏水笔画出边界。接着,用通透缓冲液对切片进行通透处理,持续20至30分钟。使用含Triton的TBS缓冲液洗涤切片两次,每次5分钟。然后,配制EdU反应溶液。
将切片置于EdU反应液中孵育30分钟至1小时。随后用含Triton的TBS溶液洗涤3次,每次5分钟。此时,可通过荧光显微镜检查EdU反应是否成功。若反应有效,应观察到EdU标记的细胞。接下来,使用与二抗同源动物来源的封闭缓冲液对封片组织切片进行封闭,孵育时间为30分钟至1小时。然后用含Triton的TBS溶液洗涤2次,每次5分钟。
在封闭步骤期间,将一抗用封闭缓冲液稀释,配制一抗溶液。随后,每张切片加入250微升一抗溶液,确保组织切片完全浸没,并于室温孵育过夜。次日,用TBS-Triton溶液洗涤组织切片三次,每次5分钟,以去除未结合的一抗。
然后,将组织切片置于含有荧光标记二抗的封闭缓冲液中,室温孵育2小时。用含吐温的TBS缓冲液洗涤组织切片3次,每次5分钟,以去除未结合的二抗。接着,加入稀释比例为1:100、浓度为300微摩尔的DAPI溶液,室温孵育15分钟。随后,用PBS缓冲液洗涤组织切片3次,每次5分钟,以去除多余的DAPI,并用棉签擦去组织周围的PAP笔画线。待切片干燥后,加入封片剂并加盖盖玻片。
本文概述了一种使用EdU和特异性抗体对固定的小鼠脑切片中的神经干细胞进行染色的详细实验方案。该方法包括通透、封闭以及荧光显微镜观察等多个步骤,以实现对标记细胞的可视化。
该方案可实现对脑组织中增殖神经干细胞的精确定位可视化,有助于神经退行性疾病研究中的靶点验证。通过将EdU标记与免疫荧光技术相结合,可获得具有空间分辨能力的细胞增殖与蛋白表达的定量数据。这有助于在早期发现阶段,通过在与疾病相关的体系中确认细胞表型,从而增强机制性风险排除。
该方法适用于从靶点假设验证到临床前验证的整个发现过程,能够对神经干细胞调节化合物进行迭代优化。
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最后更新:22 八月 2026