评估果蝇背纵肌神经肌肉接头的结构完整性

0 次观看4:04 分钟 • July 8th, 2025

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从缓冲液中化学固定的野生型和转基因果胸开始。

在转基因胸腔中,背侧纵肌的神经肌肉接头包含表达诱导神经变性变的突变蛋白的神经元。

取出缓冲液并快速冷冻胸部,以防止在二切过程中损伤组织。

加入新鲜缓冲液并将胸部转移到解剖培养皿中。

将胸部腹侧朝上并去除神经细胞簇以暴露中线。

沿中线一分为二,得到半角。

去除多余的组织。

半糖在封闭缓冲液中孵育,以透化膜并防止非特异性抗体结合。

添加靶向 NMJ 神经元和肌肉肌动蛋白丝中表达的糖蛋白的荧光团偶联抗体。

去除未结合的抗体。

半关节排列在桥式载玻片上,添加封固剂,然后安装组织。

显微镜下可视化。

野生型相比,突变体表现出神经元染色减少,表明神经退行性变,而肌肉表现出完整的荧光。

开始二分之前,戴上冷冻防护手套和安全眼镜,并在杜瓦瓶中装满液氮。用刀片破碎机以一定角度抓住羽毛刀片,然后弯曲刀片以折断一小块。使用刀片破碎机将刀片锁定到位,并使用玻璃巴斯德移液器从样品管中取出所有 PBS。

使用低温镊子将试管浸入液氮瓶中。10秒后,使用巴斯德移液器向冰上的每个试管中加入约300微升冰冷PBS,并将一个胸部腹侧朝上放入含有冰冷PBS的10厘米硅胶弹性体涂层解剖盘中。使用一对钝镊子定位胸部,使用一对细镊子去除一些胸神经节以暴露胸部中线。

胸部中线为导向,用刀片在胸部的三分之一处做一个浅切,然后用钝钳将胸部定位成 45 度角。用刀片沿着胸部中线笔直切开,得到两个血胸,小心地切一到两刀,去除多余的组织,而不损伤背侧纵肌。然后,将肌肉组织样本放入适当标记的PBS管中。

当所有胸部样品都被一分为二后,在4摄氏度下将组织在封闭缓冲液中透化至少一小时。在孵育结束时,涡旋新鲜制备的结构染色溶液,并向每个样品中加入 150 微升染色剂,在室温下在黑暗中在旋转器上孵育两小时。染色后,在PBST中洗涤样品,并将五个增强标签堆叠并切成两半,相距15毫升,放在一张玻璃显微镜载玻片上。

使用改良的微量移液器吸头将胸部转移到每张载玻片上,并使用实验室擦拭布去除任何多余的 PBST。使用镊子排列样本,使胸部朝向肌肉面朝上。当样品方向正确后,使用 200 微升移液器吸头将 70 微升封固剂涂在每张载玻片上,并用盖玻片覆盖每张载玻片。然后,使用指甲油大量涂在盖玻片的外边缘,以获得每个组织周围的完全密封。

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最后更新:1 八月 2026