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从培养基中的人胚胎干细胞开始。
孵育以进行细胞增殖和成球形成。
将这些类器官转移至含有分化因子的新培养孔中。
在温和振荡条件下孵育。分化因子促使干细胞向神经谱系分化。
定期更换一半的培养基。
用神经诱导培养基替换原有培养基,然后孵育以获得神经前体细胞。
更换为富含生长因子的培养基,并进行孵育以促进细胞增殖和神经玫瑰花环结构的形成。
然后,在含有抑制剂的培养基中培养,以抑制非目标细胞的分化。
将该培养基更换为含有生长因子和抑制剂的培养基。孵育以诱导分化为胶质细胞和初级神经元。
随后,将神经玫瑰花结置于插入式培养板的孔中,该孔内含有富含抑制剂的成熟培养基,并将玫瑰花结放置于疏水性膜上。
在气液界面孵育,不进行振荡,以促进神经细胞和胶质细胞成熟,形成神经类器官。
每微孔分配 1,000 个细胞。在 300 × g 条件下离心 5 分钟,并在显微镜下检查细胞在微孔板中的均匀分布情况。将微孔板置于 37 °C 培养箱中过夜。
次日,观察微孔板,检查每个微孔中形成的类球体大小。使用添加了双SMAD抑制剂混合物的培养基将类球体转移至六孔板,以促进快速神经诱导。从该步骤开始,将类球体以60 RPM的转速旋转培养,以防止其相互粘连或粘附于孔板。在第1至第4天期间,在进行神经诱导前,每两到三天更换一次培养基。
从第4天到第11天,在添加了双SMAD抑制剂的B27培养基中加入EGF和bFGF(浓度均为每毫升10纳克),以促进由hESC衍生的神经玫瑰花结的增殖。从第11天到第13天,在补充有0.5微摩尔BMP抑制剂的B27培养基中培养细胞球。从第13天到第21天,在含有GDNF和BDNF(浓度均为每毫升10纳克)以及1微摩尔γ-分泌酶抑制剂的B27培养基中培养细胞球。
第21天,将一个培养板插件放入一个新的六孔板中的一个孔内。随后,在膜插件下方的每个孔中加入1毫升添加了生长因子和抑制剂的B27培养基。接着,将类球体接种于沉积在培养板插件上的亲水性聚四氟乙烯(PTFE)膜上,并在接下来的三周分化期间每两到三天更换一次培养基。从这一步开始停止旋转。
类神经体中出现玫瑰花结结构表明神经分化已启动。从第21天到第25天,使用相同的神经成熟培养基培养人神经类器官。随后,从第25天到第28天,仅在B27培养基中补充一微摩尔(1 µM)γ-分泌酶抑制剂。从第28天到第39天,停止添加γ-分泌酶抑制剂,仅使用B27培养基继续培养人神经类器官。三周后,神经类器官即可用于GIC移植。