使用实时环磷酸腺苷测定法测量气味受体激活

0 次观看3:30 分钟 • July 8th, 2025

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取一个含有转染哺乳动物细胞的多孔板。

这些细胞表达嗅觉神经元的气味受体 (OR),一种 G 蛋白偶联受体,以及一个 cAMP 生物传感器,其中包含与突变荧光素酶融合的 cAMP 结合结构域。

取出培养基并用缓冲液洗涤以去除残留培养基。

加入含有cAMP生物传感器底物的缓冲液。孵育以促进底物吸收到细胞中。

使用化学发光板阅读器测量细胞的基础发光。

孔中添加浓度增加的测试气味剂,留下一个孔未经处理作为对照。

气味剂与手术室结合并触发产生 cAMP 的信号级联反应。

该 cAMP 与生物传感器的结合结构域结合,激活荧光素酶,荧光素酶与底物相互作用发光。

实时测量发光。气味剂浓度越高,发光增加表明气味剂激活了 OR。

刺激

前,在相差显微镜下观察转染的细胞,以确保在返回培养箱之前每孔50%至80%的适当汇合。然后,通过向汉克平衡盐溶液中加入 10 毫摩尔 HEPES 和 5 毫摩尔葡萄糖来制备刺激培养基。在冰上解冻实时循环AMP测定底物试剂等分试样的55微升等分试样。

通过混合 55 微升底物试剂和 2,750 微升刺激培养基来制备 2% 平衡溶液。在工作台上铺上一层厚厚的纸巾后,将板倒置在纸巾上轻轻反复敲击,使转染介质被纸巾吸收。通过向每个孔移液 50 微升刺激培养基来洗涤细胞。

轻轻反复地从 96 孔板中敲出刺激培养基。将 25 微升 2% 平衡溶液移液到每个孔中,并在室温下在黑暗中孵育 2 小时。在孵育时间结束之前,将解冻的气味储备溶液在刺激培养基中稀释至工作浓度。

添加气味剂之前,使用化学发光酶标仪测量板的基础发光水平。快速从酶标仪中取出板,并向每个孔中加入 25 微升气味剂稀释液。然后,立即开始在 30 分钟内对所有孔进行 20 个周期的连续发光测量。

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最后更新:1 八月 2026