使用放射性标记的多巴胺测量小鼠脑突触体中的多巴胺摄取

0 次观看5:01 分钟 • July 8th, 2025

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从小鼠大脑中收获突触体,膜结合结构源自含有多巴胺转运蛋白 (DAT) 的神经元突触的完整突触前末端。

含有配体的缓冲液填充试管,用含有配体的缓冲液和DAT抑制剂填充参比试管。

添加突触体。

配体抑制多巴胺降解酶和其他转运蛋白,防止多巴胺降解和非特异性摄取。

引入未标记和放射性标记的多巴胺。

在测试条件下,突触体 DAT 吸收多巴胺。

在参考条件下,抑制剂阻止DAT介导的多巴胺摄取,仅允许背景摄取。

样品添加到保留突触体的超细纤维过滤器中。

清洗以去除未结合的多巴胺。

滤光片转移到闪烁管中。

加入含有放射性敏感化合物的闪烁流体。

将管子放入闪烁计数器中。

多巴胺的放射性发射会激发化合物发出光,发光由计数器测量。

从测试数据中减去参考值以测量突触体多巴胺摄取。

在此步骤中,将 440 微升摄取缓冲液、配体和可卡因添加到 12 个指定的 1.5 毫升微量离心管中,将 440 微升摄取缓冲液和配体添加到剩余的 36 个 1.5 毫升微量离心管中。将 6 个 2 毫升微量离心管标记为 10、5、2.5、1.25、0.62 和 0.31。然后将 750 微升摄取缓冲液和配体加入数量最少的 5 个微量离心管中。

接下来,向标记为10的试管中加入1,455.4微升摄取缓冲液和配体,14.6微升未标记的多巴胺和30微升氚化多巴胺。接下来,将 750 微升混合物从标记为 10 的管转移到标记为 5 的管中。充分混合,并将 750 微升混合物从该管转移到标有 2.5 的管中。用剩余的试管重复这种稀释

之后,将玻璃超细纤维过滤器放在 12 孔过滤桶上后,用 4 毫升吸收缓冲液预冲洗玻璃超细纤维过滤器。然后,将10微升突触体膜悬浮液加入含有440微升缓冲液的前24个1.5毫升微量离心管中。小心地涡旋,并很快旋转下来,以确保突触体被淹没在缓冲区中。

然后,将它们放在 37 摄氏度下 10 分钟。10分钟后,向前2根柱中加入50微升10微摩尔和5微摩尔的多巴胺,摇动时在37摄氏度下放置5分钟。5分钟后,通过加入1毫升冰冷摄取缓冲液停止反应。用 2.5 微摩尔和 1.25 微摩尔重复,然后用 0.62 微摩尔和 0.31 微摩尔重复

将样品加入预冲洗的超细纤维过滤器中,并用 5 x 4 毫升冰冷吸收缓冲液洗涤。将前 12 个样品添加到滤光片中后,将滤光片移至闪烁管。对接下来的 12 个样本重复此作。通过在闪烁管 49 至 51 的底部放置超细纤维过滤器,并在顶部添加 25 微升 10 微摩尔的最大多巴胺,准备 3 个最大计数管。

之后,将所有 51 个闪烁管放在通风橱中 1 小时。然后,向每个闪烁管中加入 3 毫升闪烁液,并在摇床上剧烈摇晃 1 小时。要在 beta 计数器中计算 1 分钟的氚化多巴胺,请打开程序并选择合适的设置。对于蛋白质测定,使用标准 BCA 蛋白测定试剂盒测定突触体的蛋白质浓度以进行调整,并正确比较样品之间的摄取。

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最后更新:1 八月 2026