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取一只暗适应的、麻醉的、转基因的白眼果蝇。
果蝇的复眼光感受器中表达了带有eGFP标签的TRPL离子通道。
在黑暗条件下，TRPL 定位于感光细胞微绒毛——即小网膜的膜上。
使用压缩空气将果蝇头部朝前推入移液器吸头中。
剪去尖端，并将果蝇向后推。
再次修剪，并将果蝇向前推，直至仅头部露出。
将尖端固定在粘附于载玻片的油泥中，并将载玻片置于荧光显微镜载物台上，使眼睛朝向显微镜物镜呈径向方向。
在物镜上滴加一滴水，然后降低物镜直至接触到眼睛。
拍摄感光细胞的图像。
测量感杆、细胞体和背景的荧光强度。
用橙色光照射果蝇，以诱导TRPL向细胞体转位。
重复进行成像和荧光测量。
比较图像以观察光照后感杆小体荧光减弱，表明TRPL向细胞体转位。
在非致死性处理中准备果蝇时，将经冰麻醉的果蝇头部朝前转移至一个200微升的移液器吸头中，并用压缩空气小心地将果蝇推向吸头尖端。然后，使用解剖刀在果蝇头部前方将吸头尖端切断。再用镊子小心地将果蝇向吸头内部推进数毫米。
再次剪断移液器吸头，用压缩空气将果蝇推回吸头，使仅果蝇头部从移液器吸头中露出。将一小块黏土粘附在载玻片上后，将移液器吸头压入黏土中，使果蝇的左眼或右眼朝上。在显微镜下确保眼睛方向正确。进行图像采集时，选择水浸物镜。
对于非致死性变异，使用实验室移液器在水浸物镜的下表面附着一大滴冷卻水。将制备好的果蝇载玻片小心地放置在显微镜载物台上。然后手动降低水浸物镜，直至其接触水面，或果蝇的眼睛接触到水滴。
然后，将光路切换至显微镜相机，并生成实时图像。重新调整相机的焦距，评估眼球的方向，确保眼球沿径向朝向显微镜物镜。使用查找表软件检测是否过饱和。
对于非色素性果蝇，调整曝光时间，使每个图像中最亮的像素略低于饱和极限。拍摄图像并将其保存为原始文件，以归档记录的所有相应元数据。然后，将图像导出为点阵TIFF格式。
为了定量水浸显微照片中感杆结构内相对EGFP荧光强度，需通过点击“Analyze”调整ImageJ设置，然后选择“Set Measurements”，仅勾选“Mean gray value”选项。通过点击“File”，然后选择“Open”，导入点状TIFF图像。选取图像中一个处于焦平面的代表性区域，并通过连续按压Control和Plus键将其放大至200%到300%。
接下来，选择椭圆工具。在按住 Shift 键的同时，在图像中创建一个显著小于一个荧光小眼面的圆形选区。然后，在 ImageJ 主窗口工具栏下方查找显示的确切尺寸。要测量圆形选区内的荧光强度，请使用键盘上的箭头键将圆圈移动到第一个小眼面位置，然后单击“分析”，再单击“测量”。
将弹出一个结果窗口，列出测得的灰度值。继续测量第2至第6个小网膜，同时测量背景信号。对于无色素的果蝇，还需额外测量相应细胞体区域的信号。再测量另外两个小眼的荧光，以获得三个技术重复。使用铅笔工具标记已分析的小眼，并保存该图像以供记录。
从结果窗口中选择并复制测得的灰度值，粘贴至电子表格软件中进行进一步计算。将荧光强度值按其来源分类为小眼杆、细胞体和背景，并计算每个类别的平均强度。然后根据以下公式计算小眼杆中EGFP的相对含量：非色素眼使用第一个公式，色素眼使用第二个公式。