基于免疫细胞化学成像的儿童胶质瘤细胞迁移可视化研究

0 次观看3:01 分钟 • April 28th, 2025

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从一个平底多孔板开始,该多孔板预先包被有基底膜基质,其中含有细胞外聚合物和黏附蛋白,可模拟肿瘤微环境中的基质成分。

加入含有源自儿童脑肿瘤的胶质瘤细胞神经球的培养基,确保神经球位于孔板中央位置。

基质促进神经球附着于孔壁。

加入背景抑制试剂以减少非特异性荧光。

接下来,加入绿色荧光素标记的抗 CD44 抗体。

将培养板转移至置于培养箱内的活细胞成像系统中,以维持细胞的生理条件。

随着时间推移,胶质瘤细胞会表达细胞黏附蛋白 CD44,该蛋白可与黏附蛋白相互作用。

这会激活细胞信号通路,并促进细胞从神经球中迁移出来。

荧光染料偶联的抗CD44抗体与胶质瘤细胞上表达的CD44结合,使其产生荧光。

观察到绿色荧光细胞从神经球向外移动,可证实胶质瘤细胞的迁移。

BMM 包被完成后,剪切一个 P200 吸头。从每个选定的孔中吸取 50 微升细胞培养基和神经球(NS),转移至已包被的平底孔中。通过肉眼观察每个孔中神经球的存在情况及其位置。轻柔地向每个孔中加入 50 微升稀释后的 BSR 和 ALR 抗体,等待 2 至 3 分钟使试剂充分混合。使用倒置显微镜观察,确保大多数重复孔中的神经球位于孔中央。确认无气泡后,轻柔地将培养板转移至活细胞分析仪中,操作方法如前所述。

在活细胞分析仪软件中,选择“计划采集”选项。然后点击加号标签,选择“按计划扫描”,以按照文稿中所述的时间间隔对培养板进行扫描。在软件窗口中创建或恢复容器,然后点击“新建”选项。选择“稀释克隆”扫描类型、4倍物镜,并为迁移实验选择明场和绿色荧光通道。选择培养板类型,并在板位图上通过高亮标记选定需要扫描的孔。随后设置扫描频率。点击“添加到计划”并开始扫描。

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最后更新:15 八月 2026