0 次观看 • 2:38 分钟 • April 28th, 2025
将从小鼠脑组织中分离的微动脉内皮管固定在具有持续缓冲液流动的腔室中。
将腔室放置在记录装置中。
引入一种钙离子敏感的荧光染料。孵育以使细胞摄取该染料。
洗涤以去除任何未内化的染料。
将电极插入内皮细胞并记录静息膜电位。
将浴液温度升高至生理温度,以促进细胞内钙离子与染料的结合。
激发染料并检测荧光,以定量细胞内钙离子的基础水平。
引入一种药物,该药物与内皮细胞上特定的G蛋白偶联受体结合,启动信号转导级联反应。
该级联反应将钙离子从内质网释放到细胞质中,从而增强钙染料的结合及其荧光信号。
升高的胞质钙离子水平还会激活钾离子通道,促进钾离子外流,从而降低膜电位。
记录数据。
荧光增强和膜电位降低表明内皮管功能正常。
测量内皮膜电位时,在通过4倍物镜观察的同时,使用显微操作器将锐利电极的尖端小心地置于动脉内皮管的一个细胞上方,并进入流动的生理盐溶液中。逐渐将放大倍数增加至400倍,并根据需要重新调整电极尖端的位置。使用显微操作器,将锐利电极的尖端轻柔地插入内皮管的某个细胞内,然后使用电位计开始记录膜电位(VM)。
当内皮细胞静息膜电位稳定在负30至负40毫伏时,根据实验目的施加所需的药理学试剂。在37摄氏度条件下,将荧光示踪剂加载至内皮管腔,标记质膜或目标细胞器,孵育15至30分钟。用新鲜的灌流生理盐溶液洗涤细胞,并在显微镜下以相应染料的激发波长对活细胞进行成像。
本文介绍了一种记录从小鼠脑组织中分离的微动脉内皮细胞静息膜电位的方法。该技术涉及使用钙敏感性荧光染料来测量细胞内钙水平,并评估内皮管的功能状态。
对分离的小鼠微动脉内皮细胞中的钙动力学和膜电位进行定量分析,为研究与早期靶点验证相关的血管信号传导机制提供了可靠的平台。该方法能够预测内皮功能对药物调节的反应,从而支持在血管生物学及神经血管药物研发项目中做出基于风险评估的决策。
该方法可融入从早期靶点验证到先导物识别,再到血管功能临床前评估的整个发现流程。
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
最后更新:29 八月 2026