0 次观看 • 4:31 分钟 • April 28th, 2025
取复水的纤维蛋白凝胶包埋、固定并通透化的患者来源病变纤维血管组织。该组织含有结构不规则的新生血管结构,包括内皮细胞和周细胞。
用封闭液处理组织,以防止非特异性抗体结合。
用靶向内皮细胞和周细胞表面蛋白的一抗进行孵育。
用缓冲液冲洗以去除未结合的抗体,然后在缓冲液中孵育。
缓冲液洗涤后,加入荧光染料标记的二抗,使其与一抗结合。
用缓冲液洗涤以去除过量抗体,并在缓冲液中孵育。
缓冲液洗涤后,加入细胞核染料以染色细胞核。用缓冲液和去离子水冲洗,去除未结合的染料。
将组织转移至显微镜载玻片上。
加入封片剂,并用含有快速固化封片剂的盖玻片封片。
空气干燥后,将载玻片置于低温条件下保存。随后在落射荧光显微镜下对组织成像,以观察新生血管结构中内皮细胞与周细胞的空间分布。
将培养板倾斜放置于支撑物上,在室温下用 500 µL 封闭液孵育液滴 2 小时。根据文本方案配制一抗混合液。
然后使用圆头刮勺将液滴转移至圆底96孔板中。每孔加入30 µL一抗混合液,4 °C孵育过夜。次日,将液滴转移至12孔板中,每孔含2 mL洗涤液。用三次5分钟的洗涤步骤冲洗液滴,随后再进行九次每次30分钟的洗涤。
次日,用 PBS 将液滴冲洗三次。根据文本方案配制相应的荧光素标记二抗混合液。将液滴转移至圆底 96 孔板,方法如前所述。然后在避光条件下,于室温用 30 µL 二抗混合液孵育 4 小时。
4小时后,将液滴转移至含有洗涤液的12孔板中,每孔加入2毫升洗涤液。首先用三次5分钟的洗涤步骤冲洗液滴,然后进行四次30分钟的洗涤步骤。
第二天,用洗涤液冲洗液滴5次,每次30分钟,再用PBS冲洗3次,每次30分钟。再过一天,将液滴转移至圆底96孔板中,操作方法如前所述。在室温下用Hoechst核染色剂对液滴进行复染,持续30分钟。将液滴转移至含有2毫升PBS的12孔板中,每孔加2毫升PBS。然后用PBS冲洗3次。
接下来,沿方形盖玻片的边缘涂抹一层薄而快干的封片介质,并静置干燥一分钟。然后将液滴浸入含有去离子水的12孔板的孔中进行冲洗,再将该液滴转移至显微镜载玻片上。
接下来,将15 µL非硬化型抗荧光淬灭封片剂滴加到液滴上。将盖玻片轻轻覆盖在液滴上,使封片剂面向载玻片。静置使其自然沉降。
将载玻片在室温下干燥两小时,并于4摄氏度条件下过夜保存。最后,使用配备光学切片功能的直立式落射荧光显微镜,以20倍或40倍物镜对载玻片进行成像。
本文详细介绍了一种利用荧光显微镜成像患者来源的病变纤维血管组织的实验方案。该方法通过使用特异性抗体,对新生血管结构中的内皮细胞和周细胞进行可视化观察。
该免疫荧光实验方案可实现对患者来源的纤维血管组织中内皮细胞和周细胞的精细空间定位,有助于增殖性糖尿病视网膜病变研究中的靶点验证。通过在纤维蛋白凝胶中保留新生血管结构,该方法为血管生成通路的机制性风险评估提供了具有疾病相关性的研究体系。该策略通过将分子标志物与结构病理学特征相联系,提高了临床前靶点筛选的预测可靠性。
该方法适用于从靶点鉴定到先导化合物优化的整个发现流程,可在功能检测之前提供基于成像的验证。
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最后更新:29 八月 2026