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首先用含有辣根过氧化物酶或HRP的高钾缓冲液处理小鼠海马神经元。
高钾使突触前神经元去极化,引发突触小泡胞吐作用。然后,神经元通过内吞作用将 HRP 掺入新形成的囊泡中来取回突触囊泡膜。用戊二醛固定神经元并清洗以去除多余的戊二醛。
加入过氧化氢和显色底物,被HRP氧化形成电子致密沉淀物。洗涤以去除任何未反应的底物。
用四氧化锇处理以增强膜对比度,然后洗掉多余的试剂。接下来,添加醋酸铀酰以增强细胞器对比度。
使用增加乙醇浓度使神经元脱水并将它们嵌入树脂中。
显微镜识别细胞密集区域并切除它们。然后,准备超薄切片。
将切片转移到铜网格上,并用造影剂复染。
使用透射电子显微镜,含有 HRP 的囊泡表现为电子致密结构。
通过在室温下向每个孔中加入1.5毫升高钾刺激溶液90秒来刺激海马神经元培养物。在此步骤中,制备pH 7.4的0.1摩尔二甲胂酸钠缓冲液。在室温下用 4% 戊二醛固定在 0.1 摩尔二甲胂酸钠缓冲液中至少一小时。
然后,用0.1摩尔二甲胂酸钠缓冲液洗涤细胞3次,每次7分钟。之后,制备DAB溶液并用0.22微米过滤器过滤。接下来,在 37 摄氏度下将 1.5 毫升 DAB 溶液涂抹在细胞上 30 分钟。
然后,用0.1摩尔二甲胂酸钠缓冲液洗涤细胞3次,每次7分钟。作为后固定,将神经元与1.5毫升1%四氧化锇在0.1摩尔二甲胂酸钠缓冲液中在4摄氏度下孵育一小时。
然后,用1.5毫升0.1摩尔二甲胂酸钠缓冲液洗涤神经元3次,每次7分钟。随后,用乙酸钠和冰醋酸制备0.1摩尔乙酸钠缓冲液。用 1.5 毫升 0.1 摩尔醋酸盐缓冲液洗涤细胞 3 次,每次 7 分钟。
之后,将细胞与 1.5 毫升 1% 乙酸铀酰在 0.1 摩尔醋酸盐缓冲液中在 4 摄氏度下孵育 1 小时。然后,用1.5毫升0.1摩尔醋酸盐缓冲液洗涤细胞三次,每次7分钟。在通风橱中,用50%,70%和90%乙醇的单次1.5毫升洗涤使神经元培养物脱水,每次洗涤7分钟,然后用1.5毫升100%乙醇洗涤3次,每次7分钟。
接下来,制作环氧树脂并充分混合并在真空下储存以去除气泡。在室温下在摇床上用乙醇中的 50% 环氧树脂代替乙醇 30 分钟,然后在室温下在摇床上用 70% 环氧树脂和乙醇 30 分钟来浸润样品。
将
环氧树脂溶液换成100%环氧树脂,在50摄氏度下孵育10分钟。对新鲜的 100% 环氧树脂进行两次交换。每次交换在50摄氏度下孵育一小时。然后,加入新鲜的 100% 环氧树脂,使其在 50 摄氏度下硬化过夜,然后在 60 摄氏度下硬化 36 小时以上。
然后,用珠宝商的手锯从多孔板中取出每个样品。使用倒置光学显微镜,选择细胞密集的感兴趣区域。然后,将 4 x 5 x 8 毫米的块切成立方体进行切片。然后,用1%乙酸铀酰水溶液浸没15分钟,然后用3%柠檬酸铅水溶液浸泡5分钟,以改善样品的对比度。