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从培养在多孔板中经多聚-D-赖氨酸包被的盖玻片上的野生型和CCR5基因敲除小鼠原代下丘脑神经元开始。
这些神经元在细胞质中表达绿色荧光蛋白标记的葡萄糖转运蛋白4(GFP-GLUT4)。
将盖玻片转移至载玻片上,并轻轻擦去多余的培养基,以确保成像过程中样本的稳定性。
将载玻片放置于去卷积显微镜载物台上,使盖玻片朝下。
在明场照明下观察神经元,随后依次用趋化因子CCL5和胰岛素处理。
切换至荧光照明以识别表达GFP-GLUT4的目标神经元,并调整成像参数以采集活细胞荧光图像。
在野生型神经元中,胰岛素和 CCL5 分别与胰岛素受体和 CCR5 结合,激活下游信号通路,从而驱动 GFP-GLUT4 向细胞膜转位。
在 CCR5 敲除的神经元中,CCL5 无法结合,导致 GFP-GLUT4 转位减少。
采集图像并应用去卷积算法以减少离焦光,从而提高图像的清晰度和分辨率。
为了准备活细胞成像,使用镊子小心地取出带有神经元的盖玻片,并谨慎地将其放置在玻璃载片上。然后使用精密擦拭纸通过将其折叠两次后轻轻放在盖玻片上而不移动盖玻片的方式,除去多余的培养基。
必须去除过量的培养基,以防止盖玻片上的不必要的移动。
接下来,用浓度为每毫升10纳克的CCL5或浓度为每毫升10单位的胰岛素处理所选的细胞样本,处理时间为1分钟。随后,在盖玻片边缘加入1.5微升稀释的胰岛素。然后,在60倍放大、数值孔径为1.52的物镜上滴加镜油。
随后,将盖玻片朝下并妥善固定在去卷积显微镜载物台上。使用明场或荧光照明识别目标细胞。然后调节焦距,直至目标细胞能够清晰可见。切勿将物镜移出盖玻片区域,以避免产生不必要的划痕。
接下来,通过GFP信号鉴定GFP-GLUT4。然后确定用于图像采集的目标细胞。随后,为每个目标细胞设置适当的实验参数,包括像素数、激发波长、透射百分比、曝光时间、层厚、时间间隔和总成像时间。调整曝光参数至大约2,000到3,000计数,以达到最大像素强度。
为尽量减少荧光淬灭,应尽可能降低激发光透射率,同时将曝光时间控制在1秒以内。通过移动显微镜载物台,使目标细胞的顶部和底部均略微超出焦平面,以此设定每个目标细胞的z轴层扫范围的上限和下限。