使用免疫荧光对小鼠海马切片中的突触进行显微分析

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将小鼠大脑中的海马切片放入包含缓冲液的孔中。该切片包含通过突触进行通信的神经元网络。

突触前神经元末端包含具有特征性跨膜转运蛋白的充满神经递质的囊泡,而突触后末端则具有调节神经递质受体的特征性支架蛋白。两者都是突触结构的关键标志物。

用透化阻断溶液代替缓冲液,并在搅拌下孵育以透化细胞膜并阻断非特异性结合位点。

添加靶向突触前和突触后标记物的一抗,并在搅拌下孵育以允许结合。

洗涤切片,加入对一抗具有特异性的荧光团偶联二抗,并在黑暗中搅拌孵育。

清洗切片,然后将其安装到幻灯片上。

使用共聚焦显微镜,识别感兴趣区域并放大以可视化突触。

捕获图像以识别荧光标记的突触前和突触后标记,并评估它们在突触处的共定位。

要开始免疫荧光染色,请用封闭和透化缓冲液替换切片孔中的PBS,并在室温下在摇床上孵育4至6小时。在封闭步骤结束时,在封闭和透化缓冲液中将VGLUT1抗体稀释至2000。请注意,这种稀释度可能因公司和所用抗体的批次而异。将切片在一抗溶液中在 4 摄氏度下孵育过夜。使用剧烈运动的摇晃平台。

一抗和二抗的均匀分布对于最佳染色非常重要。根据我们的经验,剧烈摇晃可以实现最佳的抗体渗透。

在一抗中孵育后,像以前一样在PBS中洗涤切片3次,每次10分钟。在最后一次洗涤期间,在封闭缓冲液中稀释适当的二抗1至500。然后将切片在室温下在该溶液中孵育2至3小时。确保切片免受光线照射,因为二抗对光敏感。

像以前一样清洗切片后,用刷子小心地从 24 孔板上取出切片,并将它们均匀地放在预先标记的载玻片上。在每片上添加一滴封固剂。然后轻轻地将玻璃盖玻片放在切片上,小心避免形成气泡。

光,让载玻片在室温下干燥至少三到四天。短期内将载玻片存放在 4 摄氏度。但为了长期储存,请将它们保持在零下 20 摄氏度。首先使用 10 倍或 20 倍物镜来识别要成像的海马体区域——在本例中,是 CA1 锥体神经元和 Schaffer 侧支轴突之间的突触。

更换为 40 倍或 63 倍油浸物镜,并通过识别连续的神经突和有组织的结构来确保切片解剖结构完好无损。使用神经元标记物(例如 MAP2)作为参考。调整每个通道的设置以获得最佳信号和 1024 x 1024 像素分辨率的对比度。设置每个激光的强度以避免任何像素饱和。

评估染色均匀的深度,然后将软件设置为获取至少八个等距 250 纳米平面的图像堆栈。然后从每个切片的同一感兴趣区域获取三个相邻的代表性图像堆栈。每个条件至少三个切片和每个治疗组六到八只动物重复采集。

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Last updated: 18 July 2026