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将小鼠脑中的海马切片放入含有缓冲液的孔中。该切片包含一个通过突触进行通信的神经元网络。
突触前神经元末梢含有充满神经递质的囊泡,这些囊泡具有特征性的跨膜转运蛋白;而突触后末梢则具有调控神经递质受体的特征性支架蛋白。两者均作为突触结构的关键标志物。
用通透封闭液替换缓冲液,振荡孵育,以通透细胞膜并封闭非特异性结合位点。
加入靶向突触前和突触后标志物的一抗,并在振荡条件下孵育以促进结合。
洗涤切片,加入与一抗特异性结合的荧光素标记二抗,在避光条件下振荡孵育。
清洗切片,然后将其装到载玻片上。
使用共聚焦显微镜确定感兴趣区域,并放大以观察突触。
捕获图像以识别荧光标记的突触前和突触后标志物,并评估其在突触处的共定位情况。
开始免疫荧光染色时,将切片孔中的 PBS 替换为封闭和通透缓冲液,在摇床上室温孵育 4 至 6 小时。在封闭步骤接近结束时,用封闭和通透缓冲液将 VGLUT1 抗体稀释至 1:2000。请注意,该稀释比例可能因所用抗体的生产商和批次不同而有所差异。将切片置于一抗溶液中,于 4 摄氏度孵育过夜。使用具有强烈振荡运动的摇床平台。
一抗和二抗的均匀分布对于获得最佳染色效果至关重要。根据我们的经验,充分振荡有助于抗体最大程度地渗透。
一抗孵育后,将切片如前所述用 PBS 洗涤三次,每次 10 分钟。在最后一次洗涤期间,用封闭缓冲液按 1:500 的比例稀释相应的二抗。然后将切片置于该溶液中,室温孵育 2 至 3 小时。注意避光孵育,因为二抗对光敏感。
按照之前的方法清洗切片后,使用刷子小心地将切片从24孔板中取出,并均匀地放置在预先标记好的玻璃载片上。在每个切片上滴加一滴封片剂,然后轻轻盖上盖玻片,注意避免产生气泡。
避光保护,室温下干燥载玻片至少三至四天。短期储存时,将载玻片置于4摄氏度;长期储存则应保存于零下20摄氏度。首先使用10倍或20倍物镜确定需要成像的海马区区域——本例中为CA1锥体神经元与Schaffer侧支轴突之间的突触。
切换至40倍或63倍油镜物镜,通过识别连续的神经突和有序的结构来确认脑片解剖结构的完整性。使用神经元标记物(如MAP2)作为参考。调整各通道的设置,以1024×1024像素分辨率获得最佳信号和对比度。调节每台激光器的强度,避免任何像素出现饱和。
评估染色均匀的深度,然后设置软件以获取至少八个等距的250纳米光学切片的图像堆栈。随后,从每张切片的同一兴趣区域采集三个相邻的代表性图像堆栈。每种条件至少重复采集三张切片,每处理组包含六至八只动物。