0 次观看 • 3:40 分钟 • April 28th, 2025
将小鼠海马组织切片固定于实验腔室中。
切片中含有转导的神经元和星形胶质细胞,这些细胞表达一种ATP传感器,该传感器带有供体和受体荧光蛋白。
将灌流 chamber 置于荧光显微镜载物台上,并用充氧的 ACSF 进行灌流。
让切片适应缓冲条件。
使用透射光聚焦切片,并确定目标区域。
切换至荧光模式,并激发供体荧光蛋白以启动荧光发射。
当结合ATP时,该传感器发生构象变化,从而实现荧光能量从供体向受体的转移,受体在较长波长处发射荧光。
使用二向色镜和带通滤光片来分离和区分供体与受体的发射光。
选择无荧光的区域进行背景扣除。然后,识别目标细胞并记录其随时间变化的荧光信号。
通过计算FRET比率来实时监测细胞内ATP水平。
通过将实验用人工脑脊液(ACSF)连接至碳合气体源的插入式管路,并用95%氧气和5%二氧化碳混合气体持续鼓泡至少30分钟,调节其pH至7.4。整个实验过程中需持续对灌流液进行鼓泡供气。随后,打开单色仪的荧光光源。
将器官型脑片培养物转移至实验腔室中。将网格置于器官型脑片培养物上方,框架朝下但不接触培养物,网格丝线朝上并接触膜表面。将腔室放置在显微镜载物台上,并连接至灌流系统。
打开蠕动泵,调节流速至1.5至2.5毫升每分钟。确保灌注系统无泄漏。使用透射光将培养的脑片调至焦点,并确定实验将要进行的区域。
开始成像实验前,至少等待15分钟,使脑片适应灌流液环境。然后打开相机和成像软件。在435纳米波长下激发供体荧光蛋白。将曝光时间设置为40至90毫秒之间。
然后,将二向色镜和滤光片插入光束分离器单元中。使用发射光图像分离器在500纳米处分离荧光发射,并采用带通滤光片(482±16 纳米和542±13.5 纳米)进一步分离供体和受体荧光。
选择一个明显无细胞荧光的区域作为背景扣除。在屏幕上圈选标记组织中的单个结构以创建感兴趣区域(ROI)。设置在整个记录时间内图像采集的频率。对于超过30分钟的实验,建议采用0.2至0.5赫兹的采集频率,以避免光毒性。随后,开始记录。
本文介绍了一种利用荧光共振能量转移(FRET)技术在小鼠海马组织切片中实时监测细胞内ATP水平的方法。该方法采用转导表达带有供体和受体荧光蛋白的ATP传感器的神经元和星形胶质细胞。
在活体脑组织中监测细胞内ATP动态变化,可通过将细胞能量状态与功能结果相关联,实现神经治疗靶点的机制性风险评估。这种基于FRET的方法通过在生理条件下提供神经元和胶质细胞代谢的定量、实时读数,支持早期发现阶段的靶点验证。该方法在保留组织结构的同时,允许对药物或遗传干预引起的ATP波动进行纵向评估,从而提高临床前模型的预测可信度。
该方法适用于从早期靶点验证到临床前特征分析的整个发现流程,其中实时ATP监测可同时为作用机制和细胞毒性评估提供信息。
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最后更新:29 八月 2026