通过免疫标记与姜黄素染色对脑组织切片中的β-淀粉样蛋白斑块进行成像

0 次观看3:14 分钟 • May 29th, 2025

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从神经退行性小鼠模型的脑切片开始。

使用添加去污剂的封闭液孵育,以增强组织通透性并阻断非特异性结合。弃去封闭液。

加入靶向β-淀粉样蛋白斑块的一抗。在振荡条件下孵育,使一抗与β-淀粉样蛋白斑块结合,随后洗涤。

加入红色荧光标记的二抗,并在避光条件下孵育,以使抗体发生结合反应。

洗涤以去除未结合的抗体,随后进行酒精洗涤。

加入姜黄素(可高亲和力结合富含β-折叠的淀粉样蛋白),然后洗涤。

接着,用浓度递增的酒精处理,以脱水脑切片。加入二甲苯以去除任何残留的试剂。

将切片置于载玻片上,并在荧光显微镜下观察。

使用波长为 590 纳米的激光激发二抗上的红色荧光染料。采集图像。

切换至480纳米波长的激光以激发姜黄素,使其发出绿色荧光。

叠加图像;红色和绿色荧光的共定位证实了脑组织中的β-淀粉样蛋白斑块。

使用抗Aβ抗体对冷冻切片样本进行标记时,先在12孔板的各个孔中用新鲜PBS洗涤样本三次,每次洗涤均更换PBS,随后在室温下用含10%正常山羊血清和0.5% Triton X-100的PBS溶液封闭非特异性结合位点,封闭时间为1小时。

孵育结束后,弃去封闭液,将样品在4摄氏度、150转/分钟条件下与Aβ特异性抗体孵育过夜。次日早晨,用新鲜的PBS溶液洗涤切片,每次10分钟,共洗涤三次,随后在避光条件下室温孵育与红色荧光染料偶联的适当二抗,孵育时间为1小时。

孵育结束后,用 PBS 洗涤切片三次,随后用 70% 乙醇洗涤一次。乙醇洗涤后,在室温下用 10 µM 姜黄素孵育切片 10 分钟,然后用 70% 乙醇洗涤三次,每次 1 分钟。

最后一次洗涤后,依次用90%和100%乙醇脱水,每种浓度各1分钟,然后用新鲜二甲苯浸洗两次,每次浸洗5分钟以透明切片。随后按所示方法封片并成像。

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最后更新:1 八月 2026