0 次观看 • 2:52 分钟 • May 29th, 2025
首先为双光子显微镜设置激发光。
取一只已麻醉的转基因幼鼠,其颅骨上植入了圆形玻璃成像窗和头固定板。
神经元表达红色荧光蛋白,以方便成像。
清洁玻璃成像窗口,并将幼鼠固定在双光子成像台上。
通过调整幼鼠头部,使成像窗口与显微镜物镜对齐。
使用加热垫以维持幼鼠的体温。
调整麻醉气体流速。
在盖玻片上滴加一滴水,然后降低显微镜的物镜。
双光子显微镜利用两个光子激发荧光蛋白,能够在背景噪声和光漂白最小的情况下实现神经元的精细成像。
在不同深度捕获神经元的图像,以观察其结构
最后,将图像堆叠以生成神经元的三维图像,包括其神经突起,用于研究与生长相关的形态学变化。
开始成像时,首先设置双光子激光器的波长。对于RFP激发,使用1,000纳米的波长。用70%乙醇擦拭盖玻片表面。将麻醉后的小鼠幼崽通过钛金属条固定在成像平台的钛金属板上。使用测角仪平台调整头部位置,使盖玻片与物镜平行。
成像过程中使用设定为 37 摄氏度的加热垫维持幼鼠体温,并将异氟烷浓度降低至 0.7% 至 1%。将成像支架置于双光子显微镜的 20 倍物镜下方。在盖玻片上滴加一滴水。
将软件设置为以 1.4 微米的间隔采集 z 轴层叠图像。对于第四层神经元成像,将 z 轴扫描宽度设置在 150 至 300 微米之间,以完整成像整个树突形态。采用慢速扫描和平均成像方法,以获得清晰显示神经元形态的图像。
通常需要超过 20 分钟才能获取完整的树突形态。
本文详细介绍了利用双光子显微镜对转基因小鼠幼崽中的神经元进行成像的操作步骤。该方法可实现对神经元结构的高分辨率成像,并最大程度减少背景干扰。
双光子显微镜能够实现对新生小鼠模型中神经元形态的高分辨率活体成像,有助于神经科学药物研发中的靶点验证。该技术可提供定量的结构数据,通过可视化树突分支和突触连接情况,辅助降低靶向中枢神经系统药物的机制性风险。这一能力通过将化合物效应与疾病相关系统中可测量的形态学结果相联系,从而提升早期发现阶段的预测可信度。
该方法适用于从靶点假设验证到先导化合物鉴定,再到临床前药效评估的整个发现流程,尤其适用于需要进行结构表型分析的中枢神经系统(CNS)相关研究项目。
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最后更新:22 八月 2026