$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
从含有培养基的多孔板中取出新生大鼠脑组织的 cerebellar 切片开始实验。
吸去培养基,将脑片在胞质荧光染料溶液中孵育,以标记颗粒细胞(GCs)。
将切片转移至Transwell小室膜上,并去除多余的染料。
移除插入物,向孔中加入培养基。然后,重新放入插入物,并添加培养基以覆盖组织。
孵育以使组织附着于插入膜上。
将培养板转移至连接共聚焦宏镜的培养箱中,并在培养板上放置玻璃盖。
设定培养条件,继续孵育组织,然后开始成像。
激光照射后,标记的颗粒细胞发出荧光。
拍摄延时图像,以可视化颗粒细胞通过小脑分子层的径向迁移过程。
使用成像软件分析颗粒细胞的迁移距离。
切片完成后,使用截短的白色球形吸头将样本连同 HBSS 转移至六孔板中。每孔最多放入三个切片。随后,吸除各孔中的培养基,加入 5 毫升含 10 微摩尔荧光染料的负载溶液。为避免样品暴露于光线下,用铝箔包裹培养板。然后将培养板置于摇床上,设置转速为 35 RPM。在室温下孵育 10 分钟,使染料标记细胞。
现在,像之前一样将组织切片转移至具有三微米孔径的 transwell 插入膜上。然后吸除加载培养基,仅保留组织切片。接着取出插入物及切片,向孔中加入 1.9 毫升 DMEM 培养基。然后将插入物放回,并再加入 100 微升 DMEM 以覆盖组织。
将此样品孵育两小时,之后即可观察到颗粒细胞。将无盖的培养板转移至共聚焦宏显微镜的环境培养箱中,并保持持续的气体流动。然后,将玻璃盖玻片盖在共聚焦宏显微镜的培养板插件上。对于延时实验,在继续下一步操作前,让细胞在培养箱中再孵育额外两小时。
为了观察组织切片中颗粒细胞的迁移,使用488纳米的光照射样本,并采用2倍干式物镜。检测500至530纳米范围内的荧光发射信号。在ImageJ中,对延时成像序列中的每幅图像,使用标准差模式进行Z轴层叠投影。
调节每幅图像的对比度和亮度水平,使标记的颗粒细胞易于观察。接着,从颗粒分析菜单中选择“手动追踪”插件。使用该插件,在时间序列图像中逐帧点击每个标记细胞胞体的中心点。然后将原始追踪数据导出至电子表格,以进行进一步分析。
使用自制的智能工具重新整理从 ImageJ 导出的原始追踪数据,该工具可识别每个细胞及其对应的位置。利用该程序,计算每个细胞的总迁移距离和平均迁移速度。